GB/T38576-2020
人类血液样本采集与处理
Collectionandprocessingofhumanbloodbiomaterial
- 中国标准分类号（CCS）C40
- 国际标准分类号（ICS）07.080
- 实施日期2020-03-31
- 文件格式PDF
- 文本页数20页
- 文件大小1.21M
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人类血液样本采集与处理
国家标准 GB/T38576一2020 人类血液样本采集与处理 Coletionamdpressingofhumanboodbiomaterial" 2020-03-31发布 2020-03-31实施 国家市场监督管理总局 发布 国家标涯花管理委员会国家标准
GB/38576一2020 目 次 前言 引言 范围 2 规范性引用文件 术语和定义 总则 采集前的准备 5. 样本采集方案制定 5.2样本采集审查 5.3知情同意 采集前沟通 5.4 5.5采集前指导和培训 样本和数据采集 6.1样本采集 6.2数据采集 6.3感染预防和控制 样本和数据处理 样本处理程序 7.2样本处理过程 7.3数据处理过程 7.4质量控制 附录A规范性附录)常用真空采血管的使用 附录B(资料性附录分析前变量 附录c(资料性附录)常见样本类型处理流程 参考文献 16
GB/38576一2020 前 言 本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草
本标准由全国生物样本标准化技术委员会(SAC/TC559)提出并归口
本标准起草单位:广州中医药大学第二附属医院、生物芯片上海国家工程研究中心,浙江省肿瘤医 院、复旦大学、上海芯超生物科技有限公司、南京鼓楼医院将复旦大学附属肿瘤医院、合格评定国家 认可委员会,天津医科大学肿瘤医院、浙江省台州医院、深圳华大生命科学研究院、中山大学肿瘤防治中 心、北京协和医院、人民解放军总医院第一临床中心、复旦大学附属中山医院、上海交通大学医学院 附属新华医院、上海交通大学医学院附属仁济医院、海军军医大学附属东方肝胆外科医院
本标准主要起草人:陈曲波、部恒骏、张小燕卢欣沂、许靖曼、吴炜霖、郑智国、叶庆、杨亚军、杜祥、 孙孟红.,许蜜蝶、胡月、林爱芬、李海欣、石晶晶,彦卫华、曾、彭按平、孙静、王楚杨、李启沅,郑小辉 贾卫华,康晓梢、王伟业、张可浩、杜莉利,满秋红、李卡,郭丹、杨远、赵秀梅
GB/T38576一2020 引 言 生物资源对生命科学的研发及其应用至关重要
生物样本库是构建和管理用于临床研究所需的生 物资源,也是探索疾病发生、发展、转归、诊断和治疗、药物研发、健康预防等研究与转化应用的重要 基础
人类生物样本是人类疾病临床与基础转化医学研究的重要桥梁,是精准医学研究的不可再生性资 源
生物样本保藏过程主要包括生物样本和相关数据的采集/收集、获取和接收、记录、登记、编目/分 类、检查、制备、保存、储存、数据管理、销毁、包装以及安全防护、分发和运输等
以标准化的方式进行 样本采集,处理运输、储存及检索与查询,是正确使用和共享生物样本资源的根本保证,作为生物样本 保藏活动起始两个关键节点,生物样本及其相关数据的采集与处理规范化非常重要 血液样本是人类生物样本库主要样本类型,与临床诊治过程中采集的血液样本明显不同的是,生物 样本库采集的血液样本不仅有全血、血清、血浆,还包括血凝块.白膜层、外周血单个核细胞等血液样本 及其衍生物;另一个特点是,生物样本库采集血液样本时还必须通过严格的伦理审查和签订知情同意
鉴于此-建立人类血液样本采集与处理规范确保人类血液样本的规范化采集与处理的同时,还可为其 他各种类型样本的采集与处理提供借鉴作用,共同为建立高质量、标准化生物样本库奠定牢固基石
IN
GB/38576一2020 人类血液样本采集与处理 范围 本标准规定了对人类血液样本采集前准备,采集过程和处理过程的基本要求
本标准适用于与人类疾病相关的生物样本库及临床与基础医学研究的血液样本的采集与处理
本标准不适用于临床诊断和临床治疗用途的血液样本的采集与处理
规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的
凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件
凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件
GB/T378642019生物样本库质量和能力通用要求 ws/T3132009医务人员手卫生规范 so/Ts20658;2017医学实验室样品采集、运送、接收和处理指南(Medicallaboratories Requirementsforcolleetion，transport，receipt，andhandlingofsamples) 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件
3.1 静脉穿刺 enipuneture 通过采血针或其他采血装置穿刺静脉采集静脉血的过程
3.2 毛细血管穿刺 capillarypuncture 通过穿刺皮肤采集毛细血管血液的过程
3.3 外周血peripheralbhlood 被造血器官释放人循环系统参与循环的血
注:外周血区别于造血器官内的未成熟的血细胞或未被释放人循环的血细胞
通常指肘部曲侧静脉血液,有时也 可为指端,耳垂血液
3.4 血浆 plasma 血液的液体成分,血细胞悬浮于其中
其化学成分中,水分约占90%,其他10%以溶质血浆蛋白为 主,并含有电解质等重要组成部分
注血浆蛋白是多种蛋白质的总称,用盐析法可将其分为白蛋白,球蛋白和纤维蛋白原三类
3.5 buffercoat 白膜层 全血经离心后在血浆层与细胞层之间所呈现的灰白色膜状层
该层富含血小板和粒细胞
GB/T38576一2020 3.6 血凝块bondeot 凝血过程中,血浆中的纤维蛋白原转变为不溶的血纤维,血纤维交织成网,将血细胞网罗在内,形成 血凝块
3.7 血清 serum 血浆中去除纤维蛋白分离出来的淡黄色透明色液体
3.8 nuceicacid 核酸 以核苷酸为基本组成单位的生物信息大分子,携带和传递遗传信息
注，根据化学组成不同,核酸可分为核糖核酸(RNA)和脱氧核糖核酸(DNA). 3.9 蛋白 protein 以氨基酸为基本单位,通过肽键连接起来的一类含氮大分子有机化合物
3.10 细胞 cel 生物体形态结构和生命活动的基本单位
3.11 外泌体 eX0S0me 包含了复杂RNA和蛋白质的小膜泡(30nm150nm),其特指直径在40nm一I00nm的盘状 囊泡
总则 4.1人类血液样本采集与处理应符合GB/T37864一2019的要求
4.2生物样本库应制定成文和实施适宜的血液样本采集和处理的程序
该程序应可供负责血液样本 采集者使用,不论其是否为生物样本库人员
4.3应建立适当的质量管理体系确保符合用户需求并持续改进
4.4应具备相关的资质和设施环境
4.5应通过伦理审查并履行知情同意程序
4.6应提供足够的隐私保护,确保为用户/捐赠者保密
采集前的准备 5 5.1样本采集方案制定 在样本采集前,应根据研究的内容,制定详细的样本采集方案,以确定以下内容 血液样本采集的目的,可包含研究计划、研究意义技术路线和预期研究目标等内容 a) 捐赠者人组和排除的标准 b c 血液样本采集的类型(如血清、血浆或细胞、核酸等); 血液样本采集例数管数; d e 每例样本的采血量,采集管类型; fD 血液样本采集时间、周期的制定,如:术前术后、治疗前后、不同孕期、不同疾病阶段等
GB/38576一2020 5.2样本采集审查 5.2.1样本采集申请 生物样本采集项目负责人,应向伦理审查机构和科学技术管理部门提交样本采集方案
5.2.2伦理审查 伦理审查机构应建立相关工作程序审阅讨论样本采集申请,所有会议及其决议均应有书面记录,签 发书面意见
5.2.3科学技术审批 科学技术管理部门应建立相关工作程序对提交的生物样本采集申请进行科学评估,主要评估所收 集生物样本的科学价值,所有会议及其决议均应有书面记录,签发书面意见 5.3知情同意 应使用捐赠者能够理解的简明的语言传达信息,使他们了解采集程序的风险、益处和可能的后果
应提供包括对需要执行程序的解释等信息,以确保知情同意
5.4采集前沟通 5.4.1样本库应与捐赠者和/或用户进行血液样本采集前的信息沟通
这些信息应包括以下内容 样本库地址; a b 样本库提供的服务种类; 样本库开放时间 样本库提供的采集样本类型; d 用户申请出人库流程;各类申请表格填写说明， 捐赠者准备说明 样本运送说明,包括特殊处理要求 g 捐赠者知情同意要求; h 样本库接受和拒收样本的标准 已知对样本性能有重要影响的因素的清单; j k 样本库保护个人信息的政策 lD 样本库处理投诉的程序
5.4.2样本库应向捐赠者和用户提供包括需进行的操作的解释等信息,以使其知情并同意
5.5采集前指导和培训 5.5.1指导应包括以下内容 捐赠者身份的确认: a b 确认捐赠者符合相关要求; 示例:禁食、用药情况(最后服药时间、停药时间)治疗情况在预先规定的时间或时间间隔采集样品等
血液采集说明，原始样本容器及必需添加物的说明(见附录A); c d 可明确追溯到被捐赠者的原始样本标记方式的说明 原始样本采集者身份及采集日期的记录,以及采集时间的记录(必要时); e 采集的样本运送到样本库之前的正确储存条件的说明;
GB/T38576一2020 采样物使用后的安全处置; 8 h) 运送样本的包装; 血液样本采集设施的安全性和可及性(应满足ISO/TS20658:2017中6.3规定); j 静脉采血部位;通常选择肘前静脉,倘若此处静脉不明显,可采用手背、手腕、胭窝和外踝部静 脉;婴幼儿可采用颈外静脉; k 末梢血采血部位;成人以无名指或中指的指尖内侧为宜;特殊捐赠者如烧伤),必要时可从足 跟部两侧或大拇指采血;婴儿理想的采血部位是足底面两侧的中部或后部,针刺的深度不应超 过2mm,靠近足底面后部的针刺深度不应超过1 mm
培训应包括以下内容 5.5.2 捐赠者和样本信息的准确识别 a 对于可能遇到的样本类型采用适当的采集技术; b 样本处理储存要求; c 不良事件和其他不符合的报告和记录; d 不良事件影响的预防或控制例如急救培训) e 紧急状况 fD 电脑和其他相关信息技术的使用 8 6 样本和数据采集 6.1样本采集 6.1.1应根据保藏目的选择合适的采集部位和采集方式,并遵守相关操作规程
6.1.2应由培训合格具有采血资质的人员执行
6.1.3根据研究计划要求制定采集时间
示例:术前术后、治疗前后、不同孕期、不同疾病阶段等 6.1.4在单次静脉穿刺或毛细血管穿刺采血期间采集多个血液样品时,应遵循机构规定和采集管制造 商提供的采血顺序,赴免血液样品的污染和管间添加剂的交叉污染 6.1.5外周血采集根据所需样本类型选择合适的采血管,见附录A
6.1.6未梢血采集应选择合适的穿刺部位,进行采血之前,擦去第一滴血
6.1.7所有添加剂管的采样量应按规定要求采集
6.1.8血液样本采集后应立即按照制造商的说明要求,将含有添加剂的试管中的血液样本缓慢地翻转 并按需要的反转次数进行彻底混匀
6.2数据采集 6.2.1血液样本相关数据采集可通过样本库信息管理系统与医院信息系统(HIS)/实验室信息系统 LIS)等信息系统链接后自动采集,并应给出符合规定的书面意见(见5.2.2)
样本相关数据信息包括 但不限于;一般个人信息、临床相关资料及随访资料信息等
6.2.2样本附加信息是指生物样本保藏过程中产生的数据信息;采血管类型、样本量、样本采集时间、 样本采集者、样本处理过程、存储过程信息等
详情参见附录B. 6.3感染预防和控制 6.3.1血液样本采集时应使用一次性针头,最好使用带有安全装置的针头
对于其他血液样本采集装 置,如试管架和止血带,适用时也应使用一次性装置
6.3.2应为采集与处理样本的人员配备个人防护装备(如实验服或隔离衣和手套)
如果可能发生样
GB/38576一2020 本飞溅以及处理有害物质时,应佩戴经许可的安全眼镜,面罩或其他眼睛和脸部保护装置
6.3.3样本采集人员应遵守wS/T313一2009的规定,在接触捐赠者前后,捐赠者之间及摘除手套后 进行手卫生
手卫生设施(包括含乙醇的手部消毒剂)应便于使用
6.3.4应按照国家相关法规处理样本采集过程中产生的医疗废物
分类盛放采集过程中产生的医疗 废物: 废弃的非感染性医疗废物称一般性医疗废物,应盛放在带有警示标识的黄色包装袋内 a b 被血液、体液、排泄物污染等废物称感染性医疗废物,应盛放在带有感染性标识的黄色包装 袋内; 能够刺伤或者割伤人体的废弃的医疗垃圾称损伤性医疗废物,应盛放在带有警示标识的黄色 利器盒中; d 每天由经过培训的单位清洁工负责收集并暂时存放医疗废物,2天之内移交给无害中心运送 人员并记录 注:参见《医疗废物管理条例》
6.3.5样本采集应使用一次性无菌耗材,所需设备和耗材应清洁并维护良好
6.3.6样本采集区和处理区(台面,桌面,柜面,地板等)表面应每天清洁,有污溃时随时清洁
样本和数据处理 7.1样本处理程序 7.1.1样本处理程序的选择 样本库应选择符合预期用途并经过确认的血液样本处理程序,应记录处理过程中从事操作活动的 人员身份
每一操作程序的规定要求(性能特征)应与该样本的预期用途相关 注:首选程序可以是公认/权威教科书、经同行审议过的文章或杂志发表的,国际公认标准或指南中的,或国家、地 区法规中的程序 7.1.2样本处理程序的验证 7.1.2.1在应用前,样本库应对未加修改而使用的已确认的处理程序进行独立验证 7.1.2.2 样本库应从制造商或方法开发者处获得相关信息.以确定处理操作程序的性能特征
7.1.2.3样本库进行的独立验证,应通过获取客观证据(以性能特征形式)证实处理操作程序的性能与 其声明相符
应将验证程序文件化,并记录验证结果
验证结果应由适当的授权人员审核并记录审梭 过程
7.1.3样本处理程序的确认 7.1.3.1样本库应对以下来源的血液处理程序进行确认 非标准方法; a b 样本库设计或制定的方法; 超出预定范围使用的标准方法 c d 修改过的确认方法
7.1.3.2方法确认应尽可能全面,并通过客观证据(以性能特征形式)证实其满足研究预期用途的特定 要求
样本库应制定方法确认程序文件,并记录确认结果
确认结果应由授权人员审核并记录审核过 程
当对确认过的操作程序进行变更时,应将改变所引起的影响成文,适当时,应重新进行确认
GB/T38576一2020 7.2样本处理过程 7.2.1血液样本处理应由培训合格的生物样本库技术人员执行
7.2.2原始血液样本经过物理分离可获得简单衍生物,如血清、血凝块、血浆、白膜层等(参见附录C)
处理方法包括但不限于以下内容: 离心,如;密度梯度离心,超速离心、低温离心、,二次离心等; a bn 分装 c 标识 7.2.3原始血液样本经过多步分离或添加试剂可获得复杂衍生物,如核酸、蛋白、单个核细胞、血小板、 外泌体等
应针对影响这些血液衍生物质量的关键步骤,建立、成文并实施质量控制(QC)程序,评估衍 生物的重要质量特性,包括稳定性,处理方法的性能和质量控制程序的准确度/精密度
注1:使用其他类型采血管(如核酸、外周血单个核细胞采血管)采得的血液样本提取核酸、分离细胞时,按照相关采 血管及配套说明流程进行样本处理 注2;使用普通抗凝采血管,即乙二胺四乙酸(EDTA)采血管采得的血液样本提取核酸蛋白,分离细胞时,遵循文件 化的标准操作程序进行样本处理
7.3数据处理过程 7.3.1样本库应建立,成文并实施血液样本相关数据的传输和接收程序,数据传输应确保其完整性并 防止侵犯数据隐私
数据传输前,应就数据的采集和接收与有关各方达成工作协议
7.3.2样本库应对样本保藏过程中产生的所有数据信息做好记录,包括处理时间,处理方法、处理样本 类型、存储时间、存储温度等,参见附录B 7.4质量控制 7.4.1每一批次样本处理过程均应执行QC程序,应保留QC活动和结果的记录,以证明样本及相关数 据能满足预期要求
7.4.2应分析QC数据,如不能满足既定要求,应对不合格生物样本及相关数据进行有效标识,并采取 措施控制其报告和分发范围
7.4.3生物样本库还应定期分析QC结果的趋势,作为持续改进过程的输人
GB/38576一2020 录 附 A 规范性附录 常用真空采血管的使用 常见真空采血管的使用信息见表A.1
表A.1真空采血管使用要求 管盖 管盖颜色 可制备的 添加剂 要求 标本类型 颜色 文字描述 红色盖管血清/血凝块 无 抽血后不需要摇动 EDTA、NaEDTA 全血/PMc 紫色盖管 抽血后立即轻轻颠倒混匀5次一8次 或K,EDTAN 109mmol/L枸橡抗凝剂与血液为1;4混合,抽血后立即轻轻颠倒混 黑色盖管全血/血细胞 酸钠 匀5次一8次 109mmol/L枸橡抗凝剂与血液为1;9混合,抽血后立即轻轻颠倒混 浅蓝色盖管 全血/血浆 酸钠 匀5次8次 可将血球与血清快速很好的分开,减少影响实验的 金黄色盖管血清/血细胞含促凝剂和分离胶 因素 绿色盖管 血浆/全血 肝素锂、肝素纳 抽血后立即颠倒混匀5次一8次 灰色盖管 血浆/全血 抽血后立即轻轻颠倒混匀5次一8次 血糖降解抑制剂 各种真空采血管头盖的颜色均为国际通用标准,试管上的标签有刻度线、取血量、有效期、内含添加剂物等说明
GB/T38576一2020 附 录 B (资料性附录 分析前变量 分析前变量(版本3.0,SPRECversion3.0,适用于液体样本)见表B.1、表B.2、表B.3,表B.4、表B.5、 表B.6和表B.7
表B.1液体样本编码表 样本类型 编码 腹水 ASC AMN 羊水 BAL 支气管肺泡灌洗液 全血 BLD 骨愤抽取液 BMA 乳汁 BMK BUc 颊黏膜细胞 非密度梯度离心分离的血沉棕黄层,有活力 BUF BFF 非密度梯度离心分离的血沉棕黄层,无活力 CEL 密度梯度离心分离的单核细胞,有活力 CEN 来自非血液标本类型的新鲜细胞 来自非血液样本类型的细胞例如;腹水,羊膜),有活力 CLN 带血 CRD CsF 脑脊液 Tc 富集的(物理化学)循环肿瘤细胞 干燥全血 DwB NAs 鼻腔冲洗液 PEL 密度梯度离心分离的单核细胞,无活力 来自非血液样本类型的细胞例如:腹水,羊膜),无活力 PEN 胸腔液 PFL PLP 牙恼 血浆,单纺 PL. PL.2 血浆,双纺 RBC 红细胞 唾液 SAL 精液 SEM 血清 SER 痰 SPT
GB/38576?2020 B.1 sTL SYN ?? TER ? 24h? U24 ?? URN ?( URM ? URT ZZz B.2??/洢 ? ACD ADD ??/? CAT 鼤? CPD ?? CPT ??? CPH CSsV ??(CTC)?? EDTA? EDG ?? FL GLs HEP ? HIR ? LHB ? LHHG ???? RG oMN ?(DNA)??? PAX ???(RNA) EDTA PED ?? PET S8820????? PI1 ?? PIX ??? PPS
GB/T38576一2020 表B.2(续 主要容器类型 编码 血液DNA保存 PxD 骨随RNA保存 PXR RNL RNA保护剂 柠檬酸钠 SC 用于无细胞核酸的非醛稳定剂 SCK EDTA钠 SED 肝素钠 SHP 氟化钠/草酸伸 sPo 血清分离管与凝块激活剂 ssT TEM 其他血液RNA保存 微量元素管 TRC 未知 XXX 其他 ZZ2 表B.3液体样本处理分析前变量编码表(离心前 离心前(收集和处理之间的延迟 编码 温度 延迟时间 A 室温(RT 30min 2~10C B1 RT 10C RT 2h4h 2C10C RT F 4h一8h 210C RT 8h12h H 2C10"C RT 12h~24h 2C~10 RT 24h一48h 2"10"C M RT >48h l0C 10
GB/38576一2020 表B.3(续) 离心前收集和处理之间的延迟 编码 温度 延迟时间 35 2h N 没有离心 未知 X 其他 表B.4液体样本处理分析前变量编码表离心 离心 编码 温度 离心时间 离心力 <3000g无制动 <3000g有制动 10minl5min 3000g一6000g有制动 RT 000g有制动 (G 6000g一10 >10有制动 30tmin 1 M 无制动 <3000g无制动 <3000g有制动 10min15min 3000g6000g有制动 2C10C H 6000g~10000g有制动 l0 000有制动 N 没有离心 未知 其他 表B.5液体样本处理分析前变量编码表(第二次离心 第二次离心 编码 温度 离心时间 离心力 <3000g无制动 <3000g有制动 RT 10min~l5min 3000g6000g有制动 6000g一10000有制动 00o有制动 10 11
GB/T38576一2020 表B.5(续 第二次离心 编码 温度 离心时间 离心力 <3000g无制动 D <300og有制动 210 10min~15min -6有制动 3000g一 一0有制动 H 6000g >10000有制动 没有离心 N x 未知 其他 表B.6液体样本处理分析前变量编码表(离心后延迟 离心后延迟 编码 延迟时间 温度 2C10C 1h RT 2Cl0C 1h~2h RT D 2"C~10 2h8h RT G 210 8h24h H RT 2~10C 24h48h RT N -48h RT 不适用 N X 未知 其他 表B.7液体样本处理分析前变量编码表(长期储存) 长期储存 编码 存储容器 温度 -85C一60C PP管0.5ml2ml. -35 18 B <-135C 12
GB/38576一2020 表B.7(续 长期储存 编码 存储容器 温度 液氮(LN)) 1ml.一2mL -85一60 冻存管1 D 可编程冷冻至<一135 塑料低温吸管 LN G -85 -60 H 吸管 35C 18C 可编程冷冻至<一135 -85一60 PP管>5ml. 35 18 K 85C -60 微孔板 M -35 18 N 冻存管1ml~2ml 短暂-85C一60之后液氮 短暂一85 -60之后液氮 塑料低温吸管 RT 或2C10 石蜡块 35 18 袋子 LN 干燥技术介质 RT -85一60C PP管40L500AL -35C -18C 一135 其他容器 -35C -60C -18C或一85 未知 其他 13
GB/T38576一2020 录 附 资料性附录) 常见样本类型处理流程 C.1血浆分离 血浆分离流程如下 将抗凝采血管放置于离心机中,离心力调至1500g一2000g,离心10min; a b离心机停止后,取出采血管(不可颠倒),血样分为三层;上层为浅黄色澄清的血浆层,中层为灰 白色的白膜层,下层为暗红色的红细胞层 使用合适的移液枪或一次性巴氏吸管小心吸取血浆层,避免破坏白膜层; c d 将血浆分装至冻存管中
C.2 白膜层回收 白膜层回收流程如下: a 在吸出血浆后,用移液枪或一次性巴氏吸管吸取白膜层 b 将白膜层注人冻存管中
C3 血清分离 血清分离流程如下 将普通血清管(无漆加剂采血管)室温静置1h或快速血清管(含促凝剂采血管)室温静置 a) min或惰性分离胶促凝管(含惰性分离胶和促凝剂采血管)室温静置30min, 然后将采血管放置于离心机中,离心力调至1500g一2000g,离心10mmmr b c 离心机停止后,取出采血管
血样分为两层(普通或快速血清管).上层为浅黄色澄清血清层 下层为暗红色的血凝块层,或三层(惰性分离胶促凝管),上层为浅黄色澄清血清层,中层为透 明的分离胶层,下层为暗红色的血凝块层; 使用合适的移液枪或一次性巴氏吸管小心吸取血清层,避免吸取血凝块层或分离胶层 d 将血清分装至冻存管中
e 血凝块回收 C,4 血凝块回收流程如下 在吸出血清后,用移液枪或一次性巴氏吸管挑取血凝块 a b)将血凝块置于冻存管中
c.5外周血单个核细胞提取 外周血单个核细胞提取流程如下 取新鲜抗凝血(一般为EDTA抗凝血),进行血浆分离(可选); a 14
GB/38576一2020 b 向上步少浆血中加人全血稀释液(少浆血;全血稀释液为1:1),小心混匀(可选); c 根据血量准备合适体积的离心管,将适量体积的细胞分离液(具体参考试剂说明)注人离心 管中; d)将血样小心加于细胞分离液之液面,置水平离心机中(离心条件参考试剂说明)离心 e 离心后,离心管中由上至下细胞分为四层;第一层为血浆层,第二层为环状乳白色单个核细胞 层,第三层为透明分离液层,第四层为红细胞层 收集第二层单个核细胞至另一干净离心管中,加人适量细胞洗涤液,离心,弃去上清,将沉淀细 胞重新悬起,重复洗涤2次; g 收集所得血液中的单个核细胞按预期要求进行下一步处理
15
GB/T38576一2020 考文献 参 [1]GB19489一2008实验室生物安全通用要求 [2幻 GB/T20269一2006信息安全技术信息系统安全管理要求 [3]GB/T22239一2008信息安全技术信息系统安全等级保护基本要求 [4们医疗废物管理条例国务院令第380号.2003.06.16 [5]尚红,王毓三,申子瑜.全国临床检验操作规程[M门.北京;人民卫生出版社,2015,23. 16
人类血液样本采集与处理GB/T38576-2020
随着医学研究和临床应用的不断深入，人类血液样本采集与处理的规范越来越重要。GB/T38576-2020标准规定了人类血液样本采集与处理的规范，以下是详细介绍： 1. 采样前准备 在进行血液样本采集之前，应该先进行适当的体位调整，并让受检者安静15分钟以上，保证血液循环稳定。 2. 采样器具 采样器具应该符合国家和行业相关标准，例如ISO6710等标准，并且应该有生产厂商名称、规格型号、生产日期等信息。 3. 采样操作 采样时应该使用无菌器具，避免污染血液样本。同时，为避免出现误差，应该按照相应的采样方法和采样量进行操作。 4. 样本处理 血液样本采集后应该迅速进行离心和分离，保证血清或血浆的质量和稳定性。同时，在处理过程中要确保环境卫生干净，避免污染。 5. 样本保存和运输 血液样本应该在规定时间内送到实验室进行检测，如果无法及时送达，应该储存于低温冰箱中。在储存和运输过程中，应该严格控制温度和湿度，保证样本的完整性。 综上所述，GB/T38576-2020标准规定了人类血液样本采集与处理的规范，这些规范将有助于提高血液样本质量，确保医疗诊断和治疗的准确性。
