GB/T29764-2013
化学品青鳉鱼早期生命阶段毒性试验
Chemicals-fish(Oryziaslatipes,d-rRMedaka)earlylifestagetoxicitytest
- 中国标准分类号（CCS）A80
- 国际标准分类号（ICS）11.100
- 实施日期2014-03-20
- 文件格式PDF
- 文本页数15页
- 文件大小452.30KB
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化学品青鳉鱼早期生命阶段毒性试验
国家标准 GB/T29764一2013 化学品青鲸鱼早期生命阶段毒性试验 Chemicals一FishOryziaslatipes,l-rRMedaka)earlylifestagetosieity test 2013-09-18发布 2014-03-20实施 国家质量监督检验检疫总局 发布 国家标准化管理委员会国家标准
GB/T29764一2013 目 次 前言 范围 规范性引用文件 术语和定义 受试物信息 方法概述 仪器设备 试验准备 试验程序 质量保证与质量控制 数据与报告 l0 附录A(资料性附录)青鳍(Oyziaslaties,drRMedaka)驯养繁殖和培育的环境参数 附录B(资料性附录 合格稀释水的化学特征 附录c资料性附录孵化液的配制成分 参考文献
GB/T29764一2013 前 言 本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草
本标准参照了经济合作与发展组织(OECD)化学品测试导则No.210(1992年《鱼类早期生命阶段 毒性试验X英文版),并主要增加了以下内容 -受试生物选用d-rR品系青觞,增加了d-rR品系青新孵化幼鱼、幼鱼和亲本的投喂次数、投 喂量等资料 异常特征中增加了多种胚胎损伤和幼鱼畸形表述; 在性别比率表述中增加了雌雄形态区别 -统计参数增加了试验结束时雕雄鱼性别比率
本标准由全国危险化学品管理标准化技术委员会(sAc/Tc251)提出并归口
本标准起草单位;科学院生态环境研究中心,检验检疫科学研究院、环境保护部化学品登 记中心、上海市检测中心
本标准主要起草人;查金苗,王子健、李伟,朱莉飞,李兆利,李膝、程艳、刘纯新 m
GB/T29764一2013 化学品青峭鱼早期生命阶段毒性试验 范围 本标准规定了青郫鱼(d-rR品系青,以下简称“鱼”)早期生命阶段化学品毒性试验的方法概述、 仪器设备、试验准备、试验程序、质量保证与质量控制、数据与报告
本标准适用于测试化学品对鱼类早期生命阶段(胚胎发育和幼鱼生长阶段)的毒性
规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的,凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件
凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件 GB/T27861化学品鱼类急性毒性试验 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件
3.1 最低可观察效应浓度lowestohservederreetconeentration;ILoEc 与对照组相比,对受试物产生显著效应(<0.05)的最低受试物浓度
无观察效应浓度noobservederreetconcentration;NoEc 试验中直接低于LOEC的受试物浓度
半数致死浓度medianlethalconcentratiom;LC 引起50%的受试鱼死亡的受试物浓度,以L.C表示
受试物信息 结构式; a b)纯度; c)水中溶解度; 燕汽压 d 水解离常数(pKa); e 正辛醇/水的分配系数(P); 在水中和光中的稳定性; g h 在试验液中受试物的可靠定量分析方法及其精确度、检测限; 在试验条件下的稳定性; drR品系青的LC值; k快速生物降解性试验结果
GB/T29764一2013 方法概述 鱼类早期生命阶段毒性试验优先采用流水式试验系统，可选择半静态(静水更新)试验系统，将胚 胎-幼鱼阶段的受试鱼(d-rR品系青)暴露于一定浓度范围的受试物水溶液中
试验自受精卵放人试 验容器时开始,至幼鱼达到21日龄时结束
通过测定受试鱼的致死和亚致死效应，并与对照组值相比 较来测定受试物的LOEC和NOEC
仪器设备 仪器设备如下: a)实验室常规仪器设备 b)测定水温、pH值、溶解氧和硬度的仪器; 温度控制仪 D 试验容器或装置:全玻璃、不锈钢或其他化学惰性材质制成,容器的尺寸符合负荷率标准
流 水式试验方法采用流水式试验装置,具备受试物贮备液连续分配和稀释系统,并具控温,充气、 流量等装置
试验准备 系统选择 试验期间应尽可能维持条件的恒定,推荐流水式试验系统或半静态试验系统
7.2受试生物 7.2.1受试生物的选择 本试验推荐受试生物为dR品系青峭
7.2.2 受试生物的驯养 亲鱼驯化所需适宜条件的详细资料可参见附录A
7.3试验水质 试验用水符合附录B要求，或参照附录C配制孵化液作为试验用水
实验用水应满足以下要求 对照组中受试鱼的孵化率应大于或等于80%,孵化后幼鱼的存活率应大于或等于80%
试验期间应保 持水质恒定，并对水样进行定期分析，以保证稀释不会对试验结果和亲鱼繁殖产生不良影响例如对 受试物的络合作用)
稀释水样的水质分析指标包括，重金属(如C+、Pb+,Zn+、Hgr,cd Ni+),主要阴、阳离子如Ca+,Mg'+,Na,K+,CI,SO”-),常见农药,总有机碳和悬浮物等
7.4试验溶液 7.4.1通过稀释受试物的浓缩贮备液(母液)来配制所选择浓度的试验溶液
7.4.2贮备液配制;最好选择机械方法(如搅拌或超声),使受试物在稀释水中简单地混合或搅动
根 据受试物溶解度值来确定浓缩贮备液的适宜浓度
某些情况下，配制高浓度贮备液需要添加助溶剂或 分散剂，但应尽可能避免使用
适合本试验的助溶剂有:丙酮乙醇、甲醇、二甲基亚讽、二甲基替甲酰
GB/T29764一2013 胺、三甘醇
适合本试验的分散剂有:聚氧乙烯化脂肪酸甘油酯、吐温-80,0.01%的纤维素甲酗,聚氧乙 烯化蓖麻油
在流水试验中，如果使用容易生物降解的试剂(如丙酮)和(或)高挥发性化合物时，应注 意这些物质可能会随着细菌的聚集而产生一些问题，影响试验结果
当使用某种助溶剂或分散剂时 助溶剂或分散剂浓度不能超过0.1mL/L,且在所有容器中浓度一致
7 .4.3对于流水式试验,应有连续分配和稀释受试物贮备液的系统(如计量系、比例稀释器和饱和系 统).将贮备液和稀释水按照一定比例和一定流速输送至试验容器，从而得到一系列浓度的试验溶液
在试验期间，应定期检查贮备液和稀释水的流速,最好为每天检查,且试验期间的流速变化应不超过 10%
流速大小的选择，应控制试验溶液的更新速率至少为每天5倍试验容器容积
7.4.4对于半静态试验中,更换试验溶液有两种可选择的方法 转移受试生物在清洁容器中配制新的试验溶液,然后将处在极少量体积旧溶液中存活的受精 a 卵和幼鱼转移至另一容器中,但要避免受精卵和幼鱼暴露于空气中 b)不转移受试生物;将受试生物体仍留在试验容器内,部分更新试验溶液(至少为2/3容器容 积 半静态试验的试验溶液更新频率取决于受试物的稳定性,但推荐每天更新
若期间受试物的浓 度不稳定,则应改为使用流水式试验
在试验溶液的更换操作中,应小心避免碰伤幼鱼 试验程序 8.1准备 8.1.1胚胎和幼体的处理 8.1.1.1胚胎;试验开始时,将受试鱼类(d-rR品系青鳍)的胚胎暴露于体积足够大的试验容器(如容 积大于150m结晶M或烧杯)中
胚胎阶段暴露采用半静态试验体系,每天更新试验溶液
8.1.1.2幼鱼;幼鱼孵出后,如有必要,将幼鱼转移至大型试验容器内(例如烧杯或一次成型鱼缸)
在 幼鱼孵出两天后开始投喂,饵料为刚孵出的丰年虫,每天2次一3次饱食投喂
幼鱼阶段暴露优先选择 流水试验体系,可选择半静态试验体系
半静态试脸可使用烧杯或浅容器,如有必要,可在烧杯底部配备可轻轻提起的网贿
如果该 8.1.1.3 容器的容积足以符合负荷要求,则不必进行胚胎相幼鱼的转移
幼鱼转移时间为孵化后2d
转移幼鱼 时,不应将幼体暴露在空气中,也不应使用网具从容器中捞取(体质较强的鱼种除外)
推荐使用巴德斯 吸液管移动胚胎和幼鱼 8.1.2暴露条件 8.1.2.1持续时间 受试鱼卵受精后应尽可能快地开始试验,在胚胎开始分裂前或胚胎开始分裂后即将胚胎放人试验 溶液，最迟不能晚于卵受精后8h
试验应最短持续到对照组试验鱼可自由摄食
根据选择的受试鱼 种决定试验持续时间,对于推荐鱼种青鳍,暴露应持续到幼鱼孵化后21d
8.1.2.2负荷 受精卵的数量应满足统计学要求
受精卵应随机分配到各浓度组中,每一浓度至少使用60粒受精 卵,且至少应在3个平行试验容器间平均分配
在没有哪气的情况下 试验溶液中溶解氧的浓度应至 少达到空气饱和度的60%
流水式测试体系中,建议24h负荷率不应超过0.5g/L,整个试验周期最 大负荷率不应超过5g/L试液
GB/T29764一2013 3 8.1.2. 光照和温度 适宜光周期为夏季16h:8h(昼:暗),冬季12h:12h(昼:夜);适宜温度为24C士1. 8.1.2.4投喂 本试验对于食物投喂要求非常严格
本质上说对于每个生命阶段应该在合适的时间提供正确的饵 料,并且提供的饵料水平应足够支持受试鱼正常生长
投喂量应该不限量，但应最小剩余
剩余的饵 料和粪便应及时清除,以避免废物累积
本试验受试鱼类(青鳍)的详细饵料和投喂次数如表1
其中 幼鱼第一次投喂时间为孵化后24h或平游时
根据试验要求,为了提高存活率和优化生长,应不断优 化饵料和投喂策略
表1不同阶段青鳞饵料组成、投喂次数和投喂量 试验阶段 饵料组成 每次投喂量 投喂次数 新孵化丰年虫、 新孵化丰年虫1次(早晨);片饲料上下午 亲本饵料 每天2%体重 薄片饲料 各1次(时间间隔不少于6h) 新孵化丰年虫、 早晨、上午和下午各1次(时间间隔不少于3h 饱食 新孵化幼鱼 原生动物、轮虫 新孵化丰年虫、 新孵化丰年虫或轮虫上下午各1次(时间 饱食 幼鱼 薄片饲料、轮虫 间隔不少于6h);薄片饲料每天1次 8.1.3试验浓度 8.1.3.1根据GB/T27861试验结果所得96hLC.值来确定试验浓度范围,试验最高浓度组应不大 于96hLC.值或10g/L 8.1.3.2通常以几何级数浓度系列设置5个受试物浓度,浓度间隔倍数不超过3.2
极限试验的浓度 组设置可少于5个浓度
浓度组设置少于5个时应说明理由
8.1.3.3避免使用助溶剂,如应使用,其浓度应不大于0.1g/儿或0.1mL/L 8.1.3.4每个浓度系列设置稀释水对照组和相应的溶剂对照组
8.2操作 8.2.1分析测量的频次 试验期间,应定期测定受试物浓度
8.2.1.1 半静态试验条件下,如受试物浓度保持在设定值士20%内,在整个试验期间应对最高试验浓 度和最低试验浓度组至少取样测定3次,样品为新配制的试液和即将更换前的试液
如果试验中受试 物浓度不能保持在设定值的士20%内(根据受试物的稳定性数据),就应在新配制试验溶液和更新试验 溶液时,对所有试验浓度取样分析,取样的次数,间隔及方式相同,除非之后状况相同(即试验期间至少 平均间隔取样3次)
更换试验溶液前对每个试验浓度中的 个平行容器取样测定受试物浓度,且测定 间隔不应超过7d
试验结果应以测定浓度为准
但如果整个试验期间受试物浓度保持在设定值或初 始浓度值的士20%内,则结果可以设定值或起始测定值为准
流水式试验,取样方式与半静态试验中相同
若试验持续时间超过7d,第1周内应采样测定 3次
8.2.1.4对样品进行离心或过滤(例如使用0.45Mm孔径滤膜)
当两者均无法分离受试物的非生物
GB/T29764一2013 利用部分和生物利用部分,无需进行样品处理
8.2.1.5试验期间,应测定所有试验容器中的溶解氧,pH值和水温,也应测定对照组和最高浓度组中 一个试验容器的总硬度和盐度
溶解氧、盐度应至少每周测量1次;半静态试验应增加溶解氧的测试 频率,尤其是每次试验溶液更新前和更新后,或至少一周一次
在半静态试验中,应在每次试验溶液更 新的开始和结束时测定pH值,流水式试验中则至少每周测定一次pH值
硬度每次试验测定一次,温 度应每天进行测量,且至少在1个试验容器中连续检测
8.2.2观察 8.2.2.1胚胎发育阶段 在受试物暴露开始时,应尽可能准确地确认胚胎发育阶段
可选择一些清洁且有代表性的卵进行 核查
8.2.2.2孵化和存活 在试验中,每天应至少观察一次孵化和存活情况,并记录数量
为避免死亡个体(卵、胚胎或幼鱼) 快速腐烂，或被其他幼鱼的活动破坏,应及时移除死亡个体
移除时要非常小心,以免碰击或损伤邻近 非常娇弱而敏感的其他个体
各生命阶段的死亡标准如下 -卵;特别是在早期阶段,蛋白质凝固和(或)沉降导致透明度下降,兼有颜色上的变化(白色不透 明); 胚胎;没有身体的运动心脏的跳动,由半透明变为不透明; -幼鱼;静止不动,无呼吸运动,心跳停止,中枢神经系统呈白色不透明颜色,对机械刺激无反应
8.2.2.3异常体征 本试验推荐鱼类(drR品系青)的异常体征如下;胚胎异常特征包括围心腔水肿、出血、凝血和蓝 色卵黄囊等;幼鱼异常特征包括脊椎弯曲出血色素沉着较少等
在试验中,应记录损伤胚胎和畸形幼 鱼的数量,观察时间间隔的长短取决于试验周期和所述的异常种类
同时,应记录异常胚胎和幼鱼的自 然发生率,通常情况可以近似认为是对照组中异常个体的百分数
在试验中,异常个体只有在死亡后才 能被移走
8.2.2.4异常行为 应记录的异常行为主要包括:呼吸频率加快、不协调的游动,无规律的静止和无规律摄食等
记录 时间间隔的长短取决于试验周期
尽管量化该结果很难,但所观察到的结果有助于解释死亡数据,判断 是否需要增加暴露时间
8.2.2.5长度 试验结束时,建议测量个体长度,可使用标准长(即体长)或全长
如果尾鳍腐烂,应使用标准长
通常,运行良好的试验中对照组各平行间的长度变化率小于或等于20%
8.2.2.6体重 试验结束时,对所有存活幼鱼进行称重
干重(60C下烘烤24h)比湿重(洁净纸吸干)好
一般情 况下,对照组各平行间的重量变化系数小于或等于20%
8.2.2.7性别比 本试验推荐的受试鱼类(d-rR品系青)性别特征如下;该品系是一个具有性别连锁色素的突变品
GB/T29764一2013 系,雄性个体为桔黄色,雌性个体为白色,容易区别雌雄特征
试验结束时,根据雌雄鱼体色,确定其性 别比 质量保证与质量控制 本实验质量保证与质量控制要求如下: 对照组和溶剂对照组中所有存活受精卵的孵化率应大于或等于80%,孵化后幼鱼存活率应大 a 于或等于80% b)试验期间,溶解氧浓度应大于空气饱和度(AsV)的60%; 整个试验期间,水温应保持在24C士1C范围内，且各组之间的水温差不大于士1.5C; d)溶液中受试物浓度应维持在测定值士20%范围内; e 使用助溶剂时,应设置溶剂对照组以证实其对鱼早期生活阶段的存活无显著影响,及其他任何 不利影响
助溶剂的所有浓度不大于0.1mL/L 10 数据与报告 10.1数据统计 10.1.1统计参数 本实验统计参数如下 累积死亡率; a b)试验结束时的健康幼鱼数; c 开始孵化出和全部孵化出的时间; D 孵化过程中损伤胚胎的数量; 孵出时畸形幼鱼的数量; 每天孵化的幼鱼数 试验结束时存活个体的体长和体重; g 畸形或异常表征的幼鱼数量; 呈现异常行为的幼鱼数量; 试验结束时雌雄鱼性别比
10.1.2统计分析方法 10.1.2.1允许对试验容器数量,试验浓度数目,受精卵数和测量参数等方面的试验设计进行合理调 整,建议统计包括试验设计和分析
10.1.2.2方差分析(ANOVA)或列联表程序分析各平行组间的变化估算L.OEC和(或)NOEC
用 邓恩特(Dunnett)方法对各浓度组及对照组之间的结果进行多重比较
采用卡方检验确定是否存在雌 雄比例失调p<0.05)
采用这类统计方法时,应首先确保试验条件的一致性,例如试验容器间的差异 要足够小(在可接受范围)
预测并报告使用方差分析和其他程序的检测能力
用概率法分析累积死亡 率和健康幼体 10.2试验报告 试验报告应列出下列相关内容: 受试物 a
GB/I29764一2013 物理属性、相关的物理-化学特征; -化学标识数据(包括纯度、所用的定量分析方法 b)受试生物 学名、品系,亲鱼的数量、来源、受精卵的收集方法和随后的处理
试验条件 -试验程序(例如暴露方式、时间负荷等); 光照周期; 试验设计; 贮备液的制备方法及试液更新的频率; -试验设置浓度,实测浓度值、平均值及标准差,试验容器间标准差，以及分析试验方法;如 果试验浓度高于受试物的水溶解度,应提供试液中受试物的测量资料 稀释水的性质pH值,硬度,温度、溶解氧、余氧(如果检测)总有机碳,悬浮物、盐度(如 果检测)和其他测定数据; 试验容器中水的性质;pH值、硬度、温度、溶解氧等 详细投喂信息如饵料类型、来源、投喂量和频率)
试验结果 dD 对照组的青鳍受精卵孵化率应大于或等于80%,孵化后幼鱼存活率应大于或等于80% 胚胎鱼苗和幼鱼阶段个体的死亡率/存活率以及总死亡率/存活率; 孵化天数和孵出数目; 体重、长度和性别比率的数据 如有,形态异常的发生及描述 如有,行为效应的发生及描述 数据的统计分析和处理; 确定每个反应的NOEC 确定每个反应的L.(OEc(力=0.05); 任何浓度-反应数据和可获得曲线
结果讨论 对偏离测试准则之处加以说明
当试验液中所测试受试物浓度水平接近分析方法的检测 限或高于受试物溶解度时,对结果的解释应慎重
GB/T29764一2013 附 录A 资料性附录 青鳞(orysiaslatipes,drRMedaka)驯养繁殖和培育的环境参数 A.1引言 青绑(ohrysiaai/)原产于日本,朝鲜,台等东亚同家和地区
A.1.1 1953年Yamamoto发 现了d-rR品系青鳍,即伴性的体色基因r,利用其等位基因,可培育通过体色差异区别雌雄的青鳍
自 从Denny对青峭饲养管理与实验操作进行了规范化后),多数国际组织认可青鳞作为实验动物 A.1.2 aR品系青峭隶属辩科,个体小,全长2 cm一5.0cm,生命力强,疾病少
易于在实验室条 件下倒养与培育
第二性征明显,可通过臀鳍和背鳍的形状比较准确区分雕雄dR品系青端雄性为橙 黄色,雌性为白色泛红
性成熟时间短,大约为3个月左有,实验室条件下通过合适的温度和光照条件 下全年连续无间隔产卵
A.2环境参数 d-rR品系青锵可以忍受较宽的温度(0C一40C),酸碱度及水的硬度,驯养时pH通常为中性
水温维持为20C~25C,养殖和产卵适宜温度24C士1C
材料和方法 容器可选用全玻璃或化学惰性材质制成,容积超过1L以上容器均可以作为产卵容器
一般青峭 产卵时间为早晨8点左右(可通过光照时间调整产卵时间),因此产卵容器中无需增加任何产卵网或其 他辅助设施
A.4繁殖 d-rR品系青鳍一般采用流水或静水繁殖,繁殖水温为24C士1C,光照条件为夏季昼夜比率为 16h;8h或冬季12h:12h
雌雄比率为2:3或1;1均可,繁殖在早晨9点左右开始,持续时间一般 2h左右
雌鱼每次产卵数量10颗一60颗,每天平均产卵25颗
卵粒成簇状,由卵膜丝粘联在一起 需要用吸管或手指将卵分开
产卵水质条件要求参见附录B A.5受精卵培育 drR品系青鳍卵的黏性较小,因此鱼卵可转人孵化器孵化,孵化温度为24C士1,光照条件同繁 殖条件一致
受精率一般可达到85%以上
孵化时间相对较长一般为7d9d,孵化率可达到85%以 上
胚胎孵化阶段一般采用静水更新培养 1 KirehenRV，westwR
TheJapanesenmedaka
lItscareanddeveopment.CarolinaBioogicalSupply，Burlington, NC，1976
2 YamamotoTMedaka(Kilifish):BioogyandStrainsKeigakuPub
Co.，Tokyo,1975
GB/T29764一2013 A.6育苗培育 刚孵出2d内青鳍处于内营养阶段,无需投喂饵料
2d后使用刚孵出的丰年虫作为开口饵料,每 天2次3次饱食投喂
幼鱼和成鱼阶段培育 drR品系青鳍的生长相对较快，一般在15d后即可使用配合饲料投喂,每天投喂2次,幼鱼阶段使 用丰年虫补充营养,后期使用冰冻丰年虾联合投喂增加营养
幼鱼和成鱼阶段一般采用静水更新或流 水养殖,本实验室采用流水养殖,养殖条件相对简单,流水条件下,鱼的密度为每升水2尾~3尾
GB/T29764一2013 附 录 B 资料性附录 合格稀释水的化学特征 合格稀释水的化学特征见表B.1
表B.1合格稀释水的化学特征 总有机氯农药与 物质 颗粒物 总有机碳 非离子氨 残留氯 总有机磷农药 总有机叙 多氯联苯 浓度 20mg/L 2mg/1 14g/L 104g/L 50ng/L 50ng/L 25ng/L 10o
GB/T29764一2013 附 录 c 资料性附录 孵化液的配制成分 孵化液制备如下 a)10.00%氯化钠(NaCI)溶液; b0.30%氧化钾(KCI)溶液; 0.40%氧化钙(CaCl2H.O)溶液; c d)1.63%硫酸镁(MgSO7H,(O)溶液
以上溶液各1mL,96mL燕僧水,在使用前混合
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GB/T29764一2013 参 考 文 献 ]OEcD(192)
Fish，Paly-lieSHgbxciety" Test.OECDGuidelineforTes ofChemicals
sting" AdoptedbytheCouncilon17thJuly,1992. [2]GB/T21281一2007，危险化学品鱼类急性毒性分级试验方法 [3] KirchenRV，westwR.TheJapanesemedaka
Itscareand ldeedopment CarolinaIiological NC，1976. supplsy，Bhulingtuon [4钉Jinmiaohaandijianwang
Assesingtechnologicalfeasibilityforwastewaterreclamationbasedl & Environment onearlylifestagetoxieityofJapanesemedaka(Oysidsaij/pes).Agrieuure，Ecosystems 2005，107:187-198. [[5 JinmiaoZhaandZijianWang
Acuteandearlylifestagetoxicityofindustrialeffluenton Japanesemedaka(Oryziaslatipes).Thescienceofthetotalenvironmentscience2006，357:l12-l19
查金苗，王子健
利用日本青鳍早期发育阶段暴露评估排水的急、慢性毒性和内分泌干扰效 [C6 应
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化学品青鳉鱼早期生命阶段毒性试验GB/T29764-2013
青鳉鱼作为淡水生态系统中重要的物种之一，其早期生命阶段包括卵、幼鱼和仔鱼等时期，对于化学品的污染非常敏感。因此，在评估化学品对水生生物的毒性时，对青鳉鱼的早期生命阶段进行毒性试验是一项必要的工作。
GB/T29764-2013标准规定了青鳉鱼早期生命阶段毒性试验的具体操作流程和试验方法，主要包括饲养条件、试验物质的选取和配制、试验设计、实验操作等方面。该标准既考虑了试验的科学性和可靠性，又兼顾了实验的经济性和操作性。
在进行毒性试验时，需要注意一些关键的指标，包括对照组、溶液的稳定性、试验物质暴露时间和浓度等。通过对这些指标的监测和分析，可以得出化学品对青鳉鱼早期生命阶段的毒性信息，并据此评估化学品对淡水生态系统的影响。
总之，GB/T29764-2013标准为青鳉鱼早期生命阶段毒性试验提供了一套规范化的操作流程和方法，具有较高的可操作性和科学性，是目前应用最广泛的试验方法之一。
