GB/T37115-2018

鲍疱疹病毒病诊断规程

Protocolofdiagnosisforinfectionwithabaloneherpersvirus

本文分享国家标准鲍疱疹病毒病诊断规程的全文阅读和高清PDF的下载,鲍疱疹病毒病诊断规程的编号:GB/T37115-2018。鲍疱疹病毒病诊断规程共有11页,发布于2019-07-01
  • 中国标准分类号(CCS)B41
  • 国际标准分类号(ICS)65.020.30
  • 实施日期2019-07-01
  • 文件格式PDF
  • 文本页数11页
  • 文件大小741.09KB

鲍疱疹病毒病诊断规程


国家标准 GB/T37115一2018 鲍疤疹病毒病诊断规程 Prot0colofdiagn0sisforinfectionwithabaloneherpersvirus 2018-12-28发布 2019-07-01实施 国家市场监督管理总局 发布 币国国家标准化管理委员会国家标准
GB/T37115一2018 前 言 本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草 请注意本文件的某些内容可能涉及专利 本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任 本标准由农业农村部提出 本标准由全国水产标准化技术委员会(SAC/TcC156)归口 本标准起草单位;深圳市检验检疫科学研究院、全国水产技术推广总站、深圳海关 本标准主要起草人:王津津、李清、余卫忠,刘、刘莹,史秀杰,郑晓聪、何俊强、于力、贾鹏、兰文升
GB/T37115一2018 鲍疤疹病毒病诊断规程 范围 本标准给出了鲍瘤疹病毒病的临床症状,规定了鲍疹病毒病组织病理学检测方法、实时荧光聚合 酶链式反应检测方法、聚合酶链式反应检测方法 本标准适用于鲍庖疹病毒病的流行病学调查、监测、诊断和检疫 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件 凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件 GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法 GB/T18088出人境动物检疫采样 SC/T7103水生动物产地检疫采样技术规范 缩略语 下列缩略语适用于本文件 AbHV;鲍炮疹病毒(AbaloneHerpesvirus) CTAB;十六婉基三甲基澳化铵(CetyltrimethylAmmoniumBromide) C值;循环值(Cyclethreshold) EB:溴化乙锭(EthidiumBromidel EDTA:乙二胶四乙酸(EthyleneDiamineTetraaceticAcid ymeraseChainReaction PCR:聚合酶链式反应(Poly quantitativereal-timePolymeraseChainReaction qPCR;实时荧光聚合酶链式反应(G 试剂和材料 4.1若非注明,本标准所用生化试剂均为分析纯的试剂 4.2若非注明,试验用水应符合GB/T6682一级水的规格 4.3Taq酶及10倍Taq酶浓缩缓冲液;Taq酶浓度为5U/L,一20C保存,避免反复冻融 4.4dNTPs;含dCTP,dGTP,dATP,dTTP各10mmoL/I 4.5qPCR引物和探针: AbHVORF66Fl:5'-CCCGGACAcCAGTAAGAAC3 AbHVORF66R1:5'-AGGCTGCTATGCGTATGA-3 探针(AbHV66Prbl)5'-6FAM-TGGCCGTcGAGATGTcCATGTAMRA-3 扩增ORF66基因长度146p片段,用于荧光PCR 参见附录A AbHVORF77Fl:5'-AAcCACTTGTTcGGG;TTCT-3 AbHVORF77RI:5'-AGGGTGATTAATGCGG.AGT-3
GB/T37115一2018 探针(AbHV77Prb1):5'-6FAM-TcCGTACGcCGGGATCTTcGT-TAMRA-3 扩增ORF77基因长度190bp片段,用于荧光PCR 参见附录A 4.6内对照引物: 18sF1;5'-CGGCTACCACATcCAAGGAA-3" 18sRl5'-GCTGGAATTACCGCGGCT-3 探针(18srRNA);5'-6VICTGCTGGCACCAG.ACTTGCCCTCTAMRA-3" 扩增鲍18srRNA基因长度187bp片段,用于荧光PCR 参见附录A) 4.7PCR引物 AbHIV-16:5'-GGCTCGTTCGGTCGTAGAATG-3 AbHV-17;5'-TCAGcGTGTACAGATcCcATGT-C3 扩增片段大小为522bp558bp 参见附录A) 4.8电泳缓冲液 4.9琼脂糖 4.10组织切片制备和染色试剂见附录B) 器材和设备 5 5.1切片机 5.2显微镜 5.3荧光PCR检测仪和PCR扩增仪 5.4组织研磨器 5.5高速台式冷冻离心机 5.0 超低温冰箱、普通冰箱 5.7高压灭菌锅 5.8干燥箱 5.9生物安全柜 5.10凝胶成像仪 5.11电泳仪 5.12移液器 临床症状 参见附录C 采样 7.1采样对象 所有年龄段的易感鲍品种,包括有初期临床症状的鲍、濒死的鲍以及发病区域内的其他健康鲍 7.2采样数量 采样数量应符合sC/T7103的要求
GB/37115一2018 7.3样品采集 按GB/T18088的规定执行,取鲍含神经组织丰富的组织器官,包括脑神经节、侧足神经节等 8 组织病理学检测 8.1取样 取鲍的神经组织 8.2固定 迅速将组织用Davidson氏固定液(见B1)固定2h以上 根据组织块大小,固定时间可适当调整 或放置过夜,期间按需要更换一次固定液 临床样品也可用10%甲醛固定,长期保存 8.3切片 固定好的组织块用水充分洗涤,按下列程序处理;70%乙醉(60min)-85%乙醉(60nmin)-95%乙 醇(60min)--无水乙醇(2次.30min/次)-二甲苯十无水乙醇(体积比1:1)(30min)-二甲苯浸泡 2次,30min/次)-二甲苯十石蜡(体积比1:1)(15nmin)-石蜡(15min)两次-石蜡包埋-切片(根 据组织块大小和种类,各步时间作适当调整) 切片厚度不超过6m. 8.4切片处理染色 二甲苯(5min)--二甲苯十无水乙醉醇(体积比1:1)(3min)-无水乙醇(3min)->95%乙醇(3min) -一85%乙醇(3min)-70%乙醇(3min)-蒸僧水(5nmin)-苏木精60min)-伊红(5nmin)-燕憎水 (5min)-85%乙醇(5min)-95%乙醇(5min)-无水乙醇浸泡(2次,5min/次)-二甲苯十无水乙醇 (体积比1:1)(5nmin)-二甲苯浸泡(2次,5nmin/次)-中性树脂封片 8.5结果判定 用普通显微镜观察,观察到器官中结缔组织以及神经组织的坏死性病变可初步判定AbHV阳性 核酸鉴定 9.1样品处理 样品采取好运送到实验室后,在1.5mL 离心管中首先加人25mg一10mg组织,加人150小l CTAB溶液(见B.2),用组织研磨器将样品匀浆成糊状,再加CTAB溶液到900AL 混匀后置于25C 作用2h待用 9.2核酸抽提 取前处理好的匀浆组织约20mg放人1.5ml微量离心管中,加800AL抽提液I酚/三氧甲烧 异戊醉)(见B.3),充分混合30s;12000r/min离心5min,取上层水相;加700AL抽提液l(三氯甲烧 异戊醇)(见B.4),用力混合30s;12000r/min离心5min,取上层水相;加1.5倍体积-20C预冷的无 水乙醉醇,混匀后一20C过夜以沉淀核酸 15000r/min离心30 ,小心弃上清,立即用滤纸吸干应 min 尽量充分吸干),37C干燥20min或抽真空干燥;最后加10L水溶解后,作为模板待用 组织核酸提取也可采用等效的商品化核酸提取试剂盒,按照说明书进行操作
GB/T37115一2018 g.3设立对照 设立阳性对照、阴性对照和空白对照,以AbHV阳性组织核酸为模板作为阳性对照,以未感染Ab HV的组织提取核酸为模板来作为阴性对照,以等体积的灭菌水为模板作为空白对照 g.4qPCR检测 9.4.1qCR反应体系 在0.2mL.PCR薄壁管或八联管中,按每个样品10倍Taq酶浓缩缓冲液(见B.5)2.5L,dNTP 0.5L、Taq酶0.5AL模板2AL、上游引物(20mol/L)和下游引物(20Mmol/L)各0.5ML、TaqMan 探针(20mol/L)0.5AL,灭菌水18L配制qPCR检测体系 反应过程中应设立阳性对照、阴性对照 和空白对照 ORF66引物组和ORF77引物组均可用于AbHV的检测,l8s探针和引物是用来检测核 酸提取效率和定量PCR过程中有无抑制剂成分 9.4.2qPCR反应条件 95C2nmin后95C15s,60C1min反应45个循环 g.4.3内对照 将内对照引物18sF1、18sR1和探针18srRNA加人9.4.1反应体系中作为内对照 9.4.4结果判定 在18s内参扩增正常的情况下,当阳性对照Ct值<35,阴性对照和空白对照无Ct值时,实验成立 在实验成立的情况下,检测样品的Ct值>40时,判定为阴性;检测样品的Ct值<35时,判定为阳性;检 测样品的3535时,判定为阴性; Ct值35时,判定为阳性 g.5PCR检测 9.5.1反应体系 PCR方法反应体系上/下游引物AbHV-16/17(10Mmol/L)各2L,模板4AL(约100ng/L). Taq酶10倍浓缩缓冲液(见B.5)25Al,加水补足至总体积50AL,或参照商业化试剂盒规定适当修改 反应体系 9.5.2反应条件 反应条件为95笔5min;94笔30s,52C30s,72C45s,40个循环;然后72延伸7min;PCR 反应条件可根据商业化酶的最适反应条件进行适当调整 9.5.3电泳检测 用1×电泳缓冲液(见B.7)配制1.5%浓度的琼脂糖凝胶[含0.54g/mlEB(见B.8),或其他等效商 品化试剂]平板 将平板放人水平电泳槽,使电谋缓冲被刚好淹没胶面 将6L样品和2儿样品缓冲 液(见B.9)混匀后加人样品孔 在电泳时设立DNA标准分子量作对照,推荐使用DNAMarker2000. 5V/em电泳约0.5h,当酚蓝到达底部时停止 在凝胶成像仪或紫外投射灯下观察有无DNA带并 判定结果
GB/37115一2018 g.5.4测序 取PCR产物进行基因序列测定,将测序结果与GenBank中参考序列(参见附录A)进行同源性 比对 9.5.5结果判定 在PCR扩增后阳性对照出现522bp558bp的DNA片段,阴性对照和空白对照均没有该核酸带 的情况下,待测样品PCR扩增后能在相应522bp558bpDNA位置上有带,且基因测序测定结果与 参考序列分析符合,可判定待测样品PCR检测结果为阳性;无带或带的大小不是522bp558bp的均 判为PCR阴性 10 综合判定 10.1疑似病例判定 符合下列条件之一者判定为疑似病例 -在养殖温度为19C左右,易感鲍类出现典型临床症状; 组织病理学观察到鲍神经组织病变 10.2确诊病例判定 符合10.1的情况,荧光PCR和PCR检测结果均为阳性,判定为确诊病例
GB/T37115一2018 附 录 A 资料性附录) 目的基因参考序列 CR方法检测目的基因参考序列 A.1 GGCTcGTTcGGTcGTAGAATGAAAATCTATCTGGA TTATACTCTcG TGAGTTACAAGTcCTTGTTCAATcGAGT GTTACAAGACCT AATcGAGTT TGTTCAATcGAGGTACAAG.A AAGACcTTGTTCcTm ACA AGCcTCCACGAACATGGTAGAATTGACACAAGC GAAGGCTTGCATGAGTCCGTCCTTGTCACTGGCCAGCATCACGATCTTGTTTGACATGGAT CTGTACAcGcTGA(558bp 参考序列病毒株:Abalone Vietoria/AUS/2009,GenBank:JX453331.l herpesvirus A.2qPCR方法检测目的基因参考序列 A.2.1AbHIvoRF66F1和R1引物扩增目的基因参考序列 TCCCGGACACCAGTAAGAACTTGTCCCTGCTCGCGCTGTAAATCACCTTGGAATCTTCC ATGGCCGTCGAGATGTCCATGGGTGAGTAGCACGTGCTGTTCTCGCTGTGTTTGATAACTT CCAGTCTCATACGCATAGCAGCCTTG146bp A.2.2AbHvORF77F1和R1引物扩增目的基因参考序列 CAACCACTTGTTCGGGTTCTCGACGACGAGTGTACATCCGTACGCGGGATCTTCGTAA AGTTCAAACTCGTGAGTCGTAACGGCCCTTCCTACT'TCGATCAAGACAGACCTGTCCTTCA GAGTGGCGTAAGGATCCCAAATCGAGATCACCAACCTGTCTTCGTCGTCAAACTCCGCATT AATCACCCTG(190bp A.2.3AbHIV18srRNAF1和R1引物扩增目的基因参考序列 CGGcTACcACATcCAAGGAAGGCAGCcAGGcGcGCAAATTAccCAATcTcGATAcCGAGG AGGTAGTG,AcGAAAAATAACAATAcGGGAcTcTTTcGAGGccCcGTAATTGGAATGAGTG TACTcTAAAcGTGTGCAcGAGGATCTATTGGAGGGCAAGTcTGGTGcCAGCAGccGcGGTA ATTcCAGc(187bp)
GB/T37115?2018 ? B 淶?? ? B.1Davidson's?? 95%? 330mL 200mL 115mL ? 335mL B.2CIAB? 2%CTAB,1.4mol/LNaCl,20.0mmol/LEDTA,20.0mol/LTris-HCl,pH7.5? ????0.25% B.3?I ?//?,1.0molLpH(7.9?0.2)Tis???''? 25;24:1?,????档 B.4?I ?/?,??24:1?,????档 B.5Taq?10?? Tris-HCI 500.0mmol/LpH8.8 KCI 500.0mmol/I TritonX-100 1% B.650?? Tris 242g Na,EDTA2H.o 37.2g ?800mL?,??; 57.1nml ? 1000ml 档
GB/T37115一2018 B.7 1×电泳缓冲液 20mL 50×电泳缓冲液 1000ml 加水定容至 室温贮存 B.8EB 用水配制成10mg/ml的浓缩液 用时每10ml电泳液或琼脂中加lL B.96×上样缓冲液 蔗糖 40g 加水溶解,定容至 100ml 溴酚蓝 0.25" 溶解后,C保存
GB/T37115一2018 录 附 C 资料性附录 鲍瘪疹病毒病 疾病描述 C.1 鲍瘤疹病毒病是由鲍庖疹病毒(AbHV)感染鲍的一种传染性流行病 2003年1月,台湾东北部的 养殖场和海域鲍均出现高死亡率,从病鲍体内检出瘪疹病毒,该事件或为鲍受抱疹病毒(鲍疤疹病毒)感 染的首个案例 2005年12月,维多利亚南海岸的鲍养殖场鲍大量死亡,受感染鲍伴有神经组织损伤 未分离得到病原 2006年1月,澳大利亚养鲍场鲍大量死亡,从病鲍神经组织检测到类疤疹病毒,首次 确定为鲍瘤修病毒疫情,其他国家的鲍种类亦可能受到影响 206年5月7日,首次在发精养鲍场附 近海域检出野生鲍因受鲍瘤疹病毒感染死亡;5月末,感染波及扩展到始发地的东部和西部海域 C.2 易感宿主 该病毒易感鲍种类包括杂色鲍

鲍疱疹病毒病诊断规程GB/T37115-2018解读

鲍疱疹病毒病是由鲍疱疹病毒引起的一种急性呼吸道感染病,临床上表现为高热、咳嗽、乏力、皮疹等症状。近年来,随着全球旅游业和国际贸易的发展,鲍疱疹病毒病也成为了国际公共卫生问题。

诊断指南

根据《鲍疱疹病毒病诊断规程GB/T37115-2018》,鲍疱疹病毒病的诊断主要包括流行病学史、临床表现和实验室检测三个方面。

流行病学史

鲍疱疹病毒病主要流行于夏季和秋季,易在集体生活场所传播。有关部门应加强对集体生活场所的管理,减少病毒的传播。

临床表现

鲍疱疹病毒病的早期症状与普通感冒相似,包括发热、头痛、喉咙痛等。随着病情的加重,还会出现咳嗽、胸闷、乏力、皮疹等症状。

实验室检测

鲍疱疹病毒病的实验室诊断主要通过核酸检测、血清学检测和病毒分离等方法进行。其中,核酸检测是目前最常用的检测方法,其敏感性和特异性都比较高。

实验室检测

鲍疱疹病毒病的实验室检测主要包括核酸检测、血清学检测和病毒分离等方法。

核酸检测

核酸检测是目前最常用的鲍疱疹病毒病实验室检测方法,其敏感性和特异性都比较高。核酸检测可以通过PCR扩增病毒的基因片段进行检测,也可以通过荧光定量PCR等方法进行检测。

血清学检测

血清学检测是检测患者体内抗体水平的方法,包括ELISA、蛋白微阵列等技术。血清学检测可以对病的早期感染进行诊断,但是在病毒感染初期,血清学检测的敏感性较低。

病毒分离

病毒分离是通过将样本接种到细胞培养物中,观察是否出现细胞变形和病毒复制等现象,来判断是否存在鲍疱疹病毒。病毒分离虽然具有较高的特异性,但其操作过程比较复杂、耗时、耗费资源,一般只用于疑难病例或研究目的。

临床表现

鲍疱疹病毒病的临床表现多样化,早期症状与普通感冒相似,包括发热、喉咙痛、鼻塞等。随着病情的加重,还会出现咳嗽、胸闷、乏力、皮疹等症状。

需要注意的是,部分患者可能没有明显的症状,或症状较轻微,这增加了鲍疱疹病毒病的传播风险。因此,及早发现并隔离病例,对于控制疫情具有十分重要的意义。

诊断标准

根据《鲍疱疹病毒病诊断规程GB/T37115-2018》,临床医生应该综合流行病学史、临床表现和实验室检测结果等多个方面,进行诊断判断。同时,在疫情高发期间,对疑似患者要及时进行隔离和诊断,并上报相关部门。

结论

鲍疱疹病毒病是一种急性呼吸道感染病,其症状多样化,严重时可导致死亡。在当前全球疫情的背景下,加强鲍疱疹病毒病的防控非常重要。为此,我们应该从流行病学调查、临床诊断和实验室检测等方面,全面加强疫情监测和防控工作,确保公共卫生安全。

鲍疱疹病毒病诊断规程的相关资料

和鲍疱疹病毒病诊断规程类似的标准

公共汽电车线网设置和调整规则
上一篇 本文分享国家标准公共汽电车线网设置和调整规则的全文阅读和高清PDF的下载,公共汽电车线网设置和调整规则的编号:GB/T37114-2018。公共汽电车线网设置和调整规则共有11页,发布于2019-07-01
后备奶牛饲养技术规范
本文分享国家标准后备奶牛饲养技术规范的全文阅读和高清PDF的下载,后备奶牛饲养技术规范的编号:GB/T37116-2018。后备奶牛饲养技术规范共有8页,发布于2019-07-01 下一篇
相关推荐