GB/T40974-2021

核酸样本质量评价方法

Qualityevaluationmethodsofthenucleicacid

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  • 中国标准分类号(CCS)C40
  • 国际标准分类号(ICS)07.080
  • 实施日期2022-06-01
  • 文件格式PDF
  • 文本页数10页
  • 文件大小713.37KB

核酸样本质量评价方法


国家标准 GB/T40974一2021 核酸样本质量评价方法 Qalityevalationmethodsofthenucleicaeid 2021-11-26发布 2022-06-01实施 国家市场监督管理总局 发布 国家标涯花管理委员会国家标准
GB/T40974一2021 次 目 前言 范围 2 规范性引用文件 术语和定义 ,. 质量评价方法 DNA样本 4.1.1DNA浓度 4.1.2DNA纯度 4.1.3DNA完整性 4.2RNA样本 4.2.1RNA浓度 4.2.2RNA纯度 4.2.3RNA完整性 参考文献
GB/40974一2021 前 言 本文件按照GB/T1.1一2020<标准化工作导则第1部分;标准化文件的结构和起草规则》的规定 起草 请注意本文件的某些内容可能涉及专利 本文件的发布机构不承担识别专利的责任 本文件由全国生物样本标准化技术委员会(SAC/TC559)提出并归口 本文件起草单位:上海生物芯片有限公司、计量科学研究院、上海芯超生物科技有限公司、上海 交通大学医学院附属仁济医院、浙江省台州医院、广东省中医院(广州中医药大学第二附属医院、国家 卫生健康委科学技术研究所、上海医药临床研究中心有限公司安捷伦科技()有限公司、珀金埃尔 默企业管理(上海)有限公司 本文件主要起草人部恒骏、王晶、张小燕、许踏曼、康晓楠、林爱芬、陈曲被、高华方、杜莉利 颜卫华、刘欣、阮亮亮、胡兴雨、牛春艳、卢欣沂、孙静、彭平、黄好、张佳
GB/T40974一2021 核酸样本质量评价方法 范围 本文件描述了核酸样本的浓度、纯度和完整性的质量评价方法 本文件适用于人、动物、植物和微生物等来源的核酸样本的质量评价 本文件不适用于小分子核酸样本的质量评价 规范性引用文件 本文件没有规范性引用文件 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件 3.1 核苷酸 nucleotide 核苷的磷酸酯,是构成核酸的基本单位 注:连接部位不同,有?'-核苷酸(核苷-2'-磷酸)、3'-核苷酸(核苷-3'-磷酸)、5'核苷酸(核苷-5'-磷酸)三种 3.2 核酸 ncleicacid 由核苷酸或脱氧核苷酸通过?',5-磷酸二酷键连接而成的一类生物大分子 具有非常重要的生物 功能,主要是贮存遗产信息和传递遗传信息 包括核糖核酸和脱氧核糖核酸两类 3.3 脱氧核糖核酸 deoxyribonucleicacid;DNA 带有遗传信息的生物大分子 由四种主要的脱氧核苷酸(脱氧单磷酸腺噪岭dAMP,脱氧单磷酸 鸟嗯怜dGMP,脱氧单磷酸胞嗜哧dCMP和脱氧单磷酸胸腺嗜哧dTMP)通过3',5'-磷酸二酯键连接而 成 注;它们的组成和排列不同,显示出不同的生物功能,如;编码功能、复制和转录的调控功能等 3.4 ribonucleicacid;RNA 核糖核酸 核酸的一类 由核甘酸通过3,s'棚腋二前键连接丽成的多聚体 注不同种类的RNA链长不同,行使各式各样的生物功能,如与蛋白质生物合成有关的RNA有信使RNA(mes sengerRNA,mRNA)、转运RNA(transferRNA,tRNA)和核糖体RNAribosomeRNA,rRNA);与转录后加 GsmmlnmlerRNA.snRNA).核仁小RNAd 工有关的RNA有核小RNA (mallnueleolarRNAs,snoRNAs);与 生物调控有关的RNA有微RNA(mieroRNAs,nmiRNA),干扰小RNA(smallinterferingRNA,siRNA)等 3.5 质粒plasmid 细菌细胞内一种自我复制的环状双链DNA分子,能稳定地独立存在于染色体外,并传递到子代 -般不整合到宿主染色体上
GB/T40974一2021 3.6 核酸浓度nucleieacidconcentrationm 单位体积核酸的含量,可使用质量浓度(如ng/AL)进行表示 注:简称浓度 3.7 核酸纯度nueleieaeidpurity 核酸中含有蛋白质、多糖、盐离子、有机溶剂等杂质的程度 注1:杂质含量越少纯度越高 注2简称纯度 3.8 核酸完整性 nucleicacidintegrity 核酸片段的长度大小和碎片化程度 注1:完整性反应样本的降解程度,直接影响后下游检测的结果 注2:简称完整性 3.9 电泳electrophoresis 在分散体系中,荷电颗粒在外加电场的影响下,向电极移动的现象 3.10 凝胶电泳 gelelectrophoresis 在一定的电场强度下,按相对分子质量大小分离和纯化核酸分子的技术 3.11 sedientationcoefficient 沉降系数 表示颗粒物质或溶质在超速离心场中的沉降速率,即为每单位离心力场的沉降速度 注;x=v/a,其中a为重力加速度或离心加速度,为沉降速度,可间接反映分子量大小 3.12 毛细管凝胶电泳eapillarygeleleetrophoresis 以毛细管为分离通道、以高压直流电场为驱动力,将凝胶移到毛细管中作支持物,根据样品中各组 分之间迁移速度而实现分离的一类液相分离技术 3.13 微流控分析 mierouidiesanalysis 使用微管道(尺寸为数十微米到数百微米)处理或操纵微小流体(体积为纳升到微升)的系统所涉及 的科学和技术 3.14 DNA完整值DNAintegritynumher;DIN DA质量分数DNAqualitysre;DQs 反应DNA完整性的数值 注对DNA进行自动化电泳或微流控分析,通过分析软件自动测定DNA完整性,DN值为1~10,数值越大表明 DNA完整性越好 DQS值为05,数值越大表明DNA完整性越好 3.15 RNA完整性分数RNAintegrityscore;RIS RNA完整值RNAintegrilynwmber;RIN(RIN" RNA质量分数RNAqualitysore;RQs 反应RNA完整性的数值
GB/T40974一2021 注:对RNA进行自动化电泳或微流控分析,其结果中28S和18S(或23S和16S)条带对应的RNA条带峰面积体现 RNA完整性,RIS/RIN/RQS值均为010,数值越大表明RNA完整性越好 质量评价方法 4.1DNA样本 4.1.1DNA浓度 分光光度法 4.1.1.1 DNA在260nm有最大的吸收峰,按式(1)计算DNA浓度 C=ODn×n×C 式中 -DNA浓度,单位为纳克每微升(ng/"L); OD 在波长260nm处DNA的吸光度 DNA溶液的稀释倍数; OD值为1对应的DNA浓度 双链DNA对应的C 为50ng/AL,单链DNA对应的 C C 为33ng/AL,寡核昔酸对应的C为20ng/AL30ng/AL. 样品不纯或超出分光光度计的量程范围时不宜使用分光光度法进行浓度测定 4.1.1.2荧光染料检测法 -般用标准品溶液的浓度(ng/mL)对应的荧光强度作回归曲线,将样本溶液的荧光强度代人回归 方程,计算出样本的浓度 对于微量和低浓度样本,宜采用荧光染料检测法,此方法受其他杂质的影响较小 4.1.1.3荧光定量CR法 绝对定量分析;起始浓度(L.og)与Ct值呈线性关系,通过已知拷贝数的标准品可以作出标准曲线 根据样本的Ct值,可计算出样本中的浓度 相对定量分析(2-ACt法);即通过计算测试样本目的基因相对于对照样本目的基因表达量的相对 变化,达到相对定量分析的目的 其中,ACt值按式(2)计算 ACt=Ct一Ct一Ct Cto ? 式中: 测试样品与对照样品的差异倍数; AC 测试样品的目的基因聚合酶链式反应(PCR)扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设 Ctg 定阔值时所经过的扩增循环次数; 测试样品的内参基因PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定值时所经过的 Ct 扩增循环次数; Ctg 对照样品的目的基因PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定阔值时所经过的 扩增循环次数 对照样品的内参基因PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定阔值时所经过的 Ct0 扩增循环次数 注,对于微量和低浓度样本,也可使用荧光定量CR的方法进行测定
GB/T40974一2021 4.1.1.4数字CR法 采用微滴发生器将含有核酸分子反应体系形成成千上万纳升级的微滴,其中每个微滴或不含待测 DNA靶分子,或含一个至数个待测DNA靶分子,且每个微滴都作为一个独立的PCR反应器 经PCR扩增后,采用微滴分析仪逐个对每个微滴进行检测,有荧光信号的微滴判读为1,没有荧光 信号的微滴判读为0 根据泊松分布原理以及阳性微滴的比例,通过分析软件可计算出待测靶DNA分子的浓度 4.1.2DNA纯度 4.1.2.1 分光光度法 纯双链DNAOD260/OD280比值应为1.8 低于1.6可能有蛋白和酚污染 高于1.9可能有RNA 污染 纯双链DNAOD260/OD230比值应在2.02.2,若OD260/OD230比值低于2.0,可能有盐离子 等杂质的残留 4.1.2.2琼脂糖凝胶电泳法 琼脂糖凝胶电泳是用琼脂糖作支持介质的一种电泳方法;琼脂糖凝胶具有的网络结构,将之置于电 场中,带有负电荷的核酸分子就会向正电极迁移 泳道口中如果存在较亮的条带,说明含有蛋白污染,宜在提取过程中增加去蛋白的步骤,去除多余 蛋白等杂质 电泳条带最前面如果有较小的条带,说明存在RNA污染,宜在提取过程中加人适当浓度的RNA 酶进行消化处理 4.1.3DNA完整性 4.1.3.1凝胶电泳法 完整性好的DNA(包括人类、动物、植物、细菌、真菌)进行凝胶电泳时,主带完整,条带弥散不明显 条带位置为滞后于标记(Marker)的最大的条带 质粒DNA存在三个构型,共价闭合环状的超螺旋构型,开环DNA构型和线性DNA构型,这三种 构型分子电泳时的迁移速度大小顺序为;超螺旋、线性和开环 超螺旋比例越高,质粒DNA完整性 越好 自动化凝胶电泳可提供DNA完整值参数,用于评价从高度完整的DNA(DIN值为10)到严重降解 的NA(DIN值为1)的各种样品 4.1.3.2毛细管凝胶电泳法 毛细管凝胶电泳分析方法可提供DNA片段峰分布分析如下: a)质量好的DNA,目标主峰锐利起峰,目标主峰前无弥散片段; b) 部分降解的DNA,目标主峰前有少量弥散片段(目标主峰依然明显); 严重降解的DNA,目标主峰不明显(无目标主峰),有大量弥散片段 c 4.1.3.3微流控分析法 微流控分析是在精细加工的微流控芯片上进行电泳分离样品,检测激光激发的荧光信号,由分析软 件生成可视化电泳图和凝胶样图像,对DNA、RNA及蛋白样本进行大小测定、定量分析与质量评价 微流控分析法可测量从高度完整的DNA(DQs值为5)到严重降解的DNA(DQs值为0)的各种
GB/T40974一2021 样品 4.2RNA样本 4.2.1RNA浓度 4.2.1.1分光光度法 用标准样品测得在波长260nm处,RNA的吸光度为1即OD.丽为1),则样品中RNA浓度为 44ng/aL 注:此结果仅适用于中性pH的缓冲体系下的测量 根据提取量将RNA稀释到适当的浓度范围,再用分光光度计进行检测,按式(3)计算RNA浓度 C=OD×n×C 3 式中: 总RNA浓度,单位为纳克每微升(ng/L): 在波长260nm处RNA的吸光度 OD6o RNA溶液的稀释倍数; C OD值为1对应的RNA浓度 注1,样品不纯则无法用分光光度法对RNA进行浓度测定,可使用其他方法 注2;c 值一般为44ng/L 4.2.1.2荧光染料检测法 -般用标准品溶液的浓度(ng/mL)对应的荧光强度作直线回归,将样本溶液的荧光强度代人回归 方程,计算出样本的核酸含量 对于微量和低浓度样本,宜采用荧光染料检测法,此方法受其他杂质的影响较小 4.2.2RNA纯度 4.2.2.1 分光光度法 RNA溶液的OD260/OD280比值在1.92.1,说明纯度较好 OD260/OD280值<1.8,说明蛋白质污染较多;OD260/OD280值>2.2,说明RNA已经降解,且可 能有异硫氮酸残存 4.2.2.2琼脂糖凝胶电泳法 电泳后点样孔较亮甚至点样孔与目标带之间有明显拖尾现象,说明杂质例如蛋白质)残留较多 如在4kb~5kb甚至再高分子量处出现条带,说明有明显DNA残留 4.2.3RNA完整性 4.2.3.1凝胶电泳法 核糖体RNA(rRNA)占总RNA的80%85%,在凝胶上可以清晰地看到28S和18SrRNA 完整 的RNA,电泳条带显示28s(2kb左右);18S(1kb左右)约为2:1 如果出现条带变小或明显的拖尾甚至弥散,说明RNA有降解 自动化凝胶电泳可以提供RNA完整值参数,用于评价从高度完整的RNA(RIN值为10)到严重 降解的RNARIN”值为1)的各种样品
GB/T40974一2021 4.2.3.2毛细管凝胶电泳法 依据RIS值可对RNA的完整性进行评分,RIS值越高,代表RNA的完整性越好 4.2.3.3微流控分析法 微流控分析可提供RNA的浓度以及大小片段峰的分布比值(例如rRNA28S,18s,5.8S占总RNA 的80%一85%) RNA28S:18S比值约为2;1,二者的峰面积较大,电泳条带清晰且宽,说明RNA完 整性较好;反之,峰面积较小,电泳呈弥散型,说明RNA已经严重降解 RIN值可作为RNA研究领域内质量评估的常规标准,用于总RNA,mRNA和小RNA的完整性 分析 可检测从高度完整的RNA(RIN值或RQs值为10)到严重降解的RNA(RIN值或RQs值为1) 的RNA样本
GB/T40974一2021 参考文献 [1]郑岚,周国平,陈凌燕,等.血液核酸扩增检测实验室室内质量控制方法探讨[].输血杂 志,2012(S1-482). [[2]张佳年,计骏,刘炳亚,等 深低温冻存胃癌样本的核酸与蛋白质质量控制研究] 肿瘤 临床,2016(1期):27-34 [3]陈保文,沈小兵,都伟欣,等.结核分枝杆菌核酸检测试剂生产质量控制与临床研究概述[]. 防痰杂志,2012(02):53-54 [4]李莲,田彩霞,廖冬梅,等.临床实验室核酸扩增分析前的质量控制[] 西部医学,201l(4): 786-786. [5]何成涛,马贵明,赵静.血站核酸检测工作的质量控制[] 临床血液学杂志(输血与检验) 2015(28):l074-1076 [[6]杨元,张思仲,邓少丽.临床核酸检测实验室的基本质量控制措施[J] 临床检验杂志,2002. 20(001):51-52. 叶子弘.金荣愉,崔海峰.核酸定量技术及其在生物检测中的应用[].计量学院学报, [7 2012,23(1);1-6. 马建岗.基因工程学原理[M]陕西;西安交通大学出版社,2001. [[8] [9]王娅,王哲,徐闯,等.核酸定量方法研究及进展].动物医学进展.2006,27(7):1-5.

核酸样本质量评价方法GB/T40974-2021

在实际应用中,为了保证核酸样本的质量,必须采用严格的样本质量评价方法。这项工作主要包括以下方面:

样本收集

样本收集时应高度重视规范化操作,避免因非规范化操作导致样本受到污染或者误差较大。

样本保存

样本保存时需要选择合适的保存条件,以确保样本的完整性和稳定性,并避免样本被污染。

核酸提取

核酸提取是核酸检测的关键步骤之一,其质量直接影响着检测结果。在核酸提取过程中,应注意避免样本受到污染,并严格按照操作规范进行操作。

检测方法及分析

核酸检测方法与分析也是保证检测结果准确性和稳定性的重要环节。目前常用的核酸检测方法主要有RT-PCR、实时荧光PCR等,而对于不同的检测方法,其所需的样本质量和纯度要求也存在差异,需要加以区分。

总之,在核酸样本质量评价方面,GB/T40974-2021为我们提供了详细的标准和指导。只有通过合理的样本质量评价,才能确保核酸检测结果的准确性和稳定性,为疫情防控工作提供更有效的支持。

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