GB/T28979-2012

欧芹壳针孢检疫鉴定方法

DetectionandidentificationofSeptoriapetroselini

本文分享国家标准欧芹壳针孢检疫鉴定方法的全文阅读和高清PDF的下载,欧芹壳针孢检疫鉴定方法的编号:GB/T28979-2012。欧芹壳针孢检疫鉴定方法共有11页,发布于2013-06-012012年第41号公告
  • 中国标准分类号(CCS)B16
  • 国际标准分类号(ICS)65.020.01
  • 实施日期2013-06-01
  • 文件格式PDF
  • 文本页数11页
  • 文件大小1.43M

欧芹壳针孢检疫鉴定方法


国家标准 GB/T28979一2012 欧芹壳针袍检疫鉴定方法 Deteetionandidentifieationofseptoriapetroselini 2012-12-31发布 2013-06-01实施 国家质量监督检监检疫总局 发布 国家标准花管理委员会国家标准
GB/T28979一2012 前 言 本标准按照GB/T1.1一2009给出的规则起草 本标准由全国植物检疫标准化技术委员会(SAC/TC271)提出并归口 本标淮起草单位;厦门出人境检验检疫局检验检疫技术中心 本标准主要起草人:林石明、廖富荣、陈青,黄蓬英、陈红运、王宏毅、吴媛
GB/T28979一2012 欧芹壳针抱检疫鉴定方法 范围 本标准规定了欧芹壳针袍的检测和鉴定方法 本标准适用于欧芹属种子苗木及其产品中欧芹壳针弛的检测和鉴定 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的 凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件 件 GBy/T18085一2000植物检疫小麦矮化腥黑穗病菌检疫鉴定方法 s/T1809进出境植物种子检疫规程 sN/T2122进出境植物及植物产品检疫抽样 欧芹壳针抱基本信息 拉丁学名Seporiaperwelini(Lber)Desmazieres 中文名称;欧芹壳针弛 属真菌界(Fungi),无性真菌门(Anamorphicfungi),未分目曾归为球壳袍目Sphaeropsidales),未 分科(曾归为球壳抱科sphaeropsidaceae),壳针抱属(Septoria) 至今尚未发现其有性阶段 欧芹壳针抱自然侵染欧芹(Petrselinumcrisbum)和莞萎(Coriandrumsativum),引起欧芹壳针袍 叶斑病 该病菌主要通过感染的种子进行远距离传播,种子是重要的初侵染源 欧芹壳针抱的其他相关信息参见附录A 方法原理 本标准通过分离培养,根据菌落形态特征,病原菌无性世代的分生抱子器、分生抱子梗和分生抱子 的形态特征,结合病菌所引起的主要危害症状,对该病原进行鉴定 主要试剂,仪器设备和用具 5.1主要试剂 次氯酸钠,蔗糖,甘油,琼脂,酒精等 5.2仪器设备 超净工作台,高压灭菌锅,光照培养箱,生物显微镜(20X400X)等 5.3用具 白瓷盘,培养皿,酒精灯,吸水纸,载玻片,盖玻片,刀片,手术剪,锻子,尖头子,刷子,pH计,血球
GB/T28979一2012 计数板,塑料袋,离心管等 抽样与检查 按SN/T1809或SN/T2122规定的抽样方法进行抽样检查 检查种子、苗木及其产品是否有病斑、小黑点(分生抱子器)等(参见附录A) 若有小黑点,直接切 片在显微镜下检查 受感染的叶片初为黄色小斑,随后变成浅黄色至黄褐色,最后为褐色的病斑 病斑 边缘颜色稍深,为坏死圈 病斑圆形至长圆球形,或不规则,平均3mnm一8mm,最大的直径约13mm 边缘具窄的褐色的坏死线 在叶柄上为卵圆形,暗褐色的小病斑 叶面上病斑产生黑色小点(即分生抱 子器) 在种子表面具黑色小病斑或小黑点 病菌分离 7.1植物组织中病菌的分离 min5" 将植物组织用1%的次氯酸钠消毒21 min,用无菌蒸僧水冲洗,在无菌条件下晾干,放置在 PDA培养基上,于20C一25C下培养3d5d后,挑取菌落边缘菌丝进行纯化 7.2种子中病菌的分离 7.2.1洗涤检查 称取50g或适量的种子,加无菌水100ml,在振荡器中振荡5min,取洗涤液在1000r/min离心 3min,弃上清液,在沉淀中加人适量(约1mL)的席尔氏液(配制方法见GB/T18085一2000的附录A) 悬浮,取1滴(约50AL)的悬浮液在显微镜下20×400×)检查 7.2.2分离培养 检查异常的种子,挑取表面具有小黑点的种子,或随机挑取种子,每份样品至少检测400粒种子 用蒸懈水将吸水纸充分湿润(避免产生多余的水),种子均匀置于吸水纸或PDA培养基上(如直径9cmm 的培养皿约25粒/m),加盖后,在20"c一22“c,在12h紫外光和12h黑暗下交替培养 或者先在 20“c下培养24h,而后于-20"c冷冻24h 5d~7d后观察培养结果,挑取可疑菌落进行分离纯化 病菌鉴定 形态特征 8.1.1在PDA培养基上(见附录B),菌落糠毗状,呈暗褐色(参见图A.3) 从病组织或分离纯化所得 的菌落挑取的分生袍子器,在立体显微镜下进行形态观察和切片(最好能够从孔口处切开),根据分生袍 子器、分生抱子梗和分生袍子的形态特征进行鉴定 8.1.2分生抱子器埋生于表皮下或稍微突出,单室,球形至近球形,有些较扁,黄色至黑褐色,直径 55Am一200Am;具近圆形至椭圆形孔口,直径204m一40Am 分生抱子器壁由多角形的厚壁细胞所 组成,厚壁细胞直径为3 um,黄色至褐色 分生袍子梗短,瓶梗形,无色透明,从分生袍子器的 Am~5 内壁伸出,产袍方式为全壁芽生合轴式 分生袍子具04个真隔膜,一般为1一3个隔膜,未成熟的可 能没有隔膜,无色透明,线状或近圆柱形,.Om一1.5m)x(22 m51丝m),长宽比例大于10,通 常稍微弯曲,基部钝圆而顶部渐尖 参见图A.4一图A.6
GB/T28979一2012 致病性测定 8.2.1接种体制备 刮取在PDA培养3d的可疑菌落的分生袍子,用无菌水配制成10CFU/ml~10'CFU/mL袍子 悬浮液 8.2.2接种试验 将欧芹种子播种于小盆钵中,每盆播种58粒种子,生长5周~7周,备用 用刷子轻扫欧芹幼苗 叶片进行创伤,将袍子悬浮液喷雾接种于欧芹的叶片上,每盆接种5株,重复二次 用无菌水作空白对 如可能,采用欧芹壳针抱已知菌株作阳性对照 接种后用干净的塑料袋包扎封口,在饱和湿度,于 照 0C下照暗中培养48h后,去掉塑料袋,在65%一70%的相对湿度下,移人培养箱,20`c- 25"C下黑 暗中培养;注意观察,一般在14d后就产生典型的症状 结果判定与样品保存 结果判定 9.1.1未分离到可疑菌落 病菌分离培养7d后,仍未产生可疑菌落,则未检出 9.1.2分离到可疑菌落 分离培养后的可疑菌落,其形态特征如果符合8.1描述的鉴定特征,经致病性接种试验又产生典型 的症状,而空白对照没有表现症状,则判定为检出;可疑菌落没有产生典型的症状,则判定为未检出 记录及样品保存 检测报告应包含所采用的病菌分离方法,包括菌落形态特征,致病性测定所产生的症状照片等 供 试样品和所分离到的菌种,应保存在低温冰箱中,以备复核
GB/T28979一2012 附 录A 资料性附录 欧芹壳针抱相关信息 病原菌的名称 A.1.1中文名称 欧芹壳针袍 A.1.2英文名称 leafblightofparsley,leafspotofparsley A.1.3拉丁学名 Septoriapetroselini(Libert)Desmazieres A.1.4同物异名 Septoriaaii(Briosi&.Cavara)RostrupsensuKleb Rostrup. punctiformisLaib. Dorogin gra7eolentis selin7DeSm aiRoum betroselini betroselinivar,abiiBriosi8.Cavara emacuulalaSac Septoriaetroselini 病原菌的分类地位 属真菌界(Fungi),无性真菌门(Anamorphiefungi),未分目曾经归为球壳袍目Sphaeropsidales). 未分科(曾经归为球壳抱科Sphaerops sidaceae),壳针泡属(Seporia) 至今尚未发现其有性阶段 A.3寄主植物 A.3.1自然寄主 欧芹壳针抱只发现侵染欧芹(Peroelinu.erisy)um)和芜萎(Coriandrwn L.),但不侵染 StiU 芹菜(Apiumgraveol le75 与之类似的芹菜生壳针袍(Seporiaapicola),不会侵染欧芹 欧芹壳针泡 引起欧芹叶斑病(亦称叶疫病),严重影响产量,影响种子的萌发率 A.3.2接种寄主 至今未发现有接种寄主
GB/T28979一2012 A.4传播途径 种子是初侵染来源 病菌在干燥的病残体上可存活3年以上,种子中可存活2年以上,枯死叶片上 也可存活几周 种子上可见分生袍子器 在大田,病菌通过雨水的飞溅风和人工或机械传带而扩散 A.5症状特征 症状主要表现于叶片和叶柄 叶片上初为黄色小斑,随后变黄褐色至浅黄色,最后为褐色 病斑圆 形至长圆球形,或不规则.平均3 mm8mm,最大约1.5cm 病斑边缘颜色稍深,边缘具窄的褐色坏 死线 在叶柄上为卵圆形、暗褐色的小病斑 病斑上产生黑色小点(即分生抱子器) 参见图A.1和图 A.2 ycnidia pycnidind 图A.1在叶片上的症状 图A.2在叶片病斑上的分生袍子器 潮湿的气候有利于病害发生,发病率达40%80% A.6菌形态特征 在PDA培养基上的菌落(参见图A.3),分生抱子器(参见图A.4),分生袍子器的孔口(参见图 A.5),分生袍子梗和产袍细胞及分生袍子(参见图A.6). 10Hm 图A.3在PDA培养基上的菌落 图A.4分生抱子器的孔口 引自lHager-IHoller,2002) 仿自lHagner-HHoler,2002)
GB/T28979一2012 1Om 图A.5分生袍子器孔口 图A.6产抱细胞和分生袍子 仿自Hagner-oller,2002) 仿自J.A.cooper) 与芹菜生壳针袍的区别 A.7 欧芹壳针袍与芹菜生壳针抱容易混淆,区别见表A.1 表A.1欧芹壳针抱与芹菜生壳针抱区别特征 形态特征 芹菜生壳针抱 欧芹壳针袍 球形至近球形,有些较扁黄色至黑褐色,直径 叶面两面生或茎上生,散生或聚生,球形或扁 分生抱子器 55Am一200m;具近圆形至椭圆形孔口,直 球形,直径70m一100Am 径204m一404m 无色透明,线状或近圆柱形,0~4个真隔膜,一般为 无色,针形,基部钝圆,1一6个隔膜,多数3一4 1一3个,(1.0 m)×(22m51m),长 分生袍子 Am~l.5Am 个 ,(2.54m5.0m)×54m104m) 宽比例大于10 产抱方式 内壁芽生瓶梗式(ebph 全壁芽生合轴式(hb -Sym A.8地理分布 美洲,美国(夏威夷、佛罗里达等),加拿大;亚洲土耳其等;欧洲;德国,英国、法国、荷兰,意大利、罗 马尼亚、乌克兰、波兰希腊、保加利亚、匈牙利、瑞士等;大洋洲;澳大利亚、新西兰等
GB/T28979一2012 B 附 录 规范性附录 PDA培养基的配制 B.1培养基配方 马铃薯200g,葡萄糖20g,琼脂20g,纯净水1000ml B.2培养基配制 将马铃薯去皮,洗净,称取200g,切成小块,放人1000mL水中煮沸20min,用双层纱布过滤,得 到马铃薯汁,补足水分,再加人20葡萄糖和琼脂不断搅拌至琼脂完全融化,补充水量至1000mL.,再 加热至沸腾,高压灭菌后使用 或选用市售PDA培养基,加人琼脂和纯净水,高压灭菌后使用
GB/T28979一2012 参 考 文 献 [1]白金铠.2003.真菌志.第十七卷球壳袍目壳二胞属壳针抱属.北京;科学出版社 [2] AgrieultureandHortieultureDevelopmentBoardUK),2010.Outdoorherbs;lntegratedl managementofparsleyseptoriaandcorianderbacterialblight,FinalReport2010,P13. [3]Best-practiceguidelinesforproteetedherbs,Septorialeafspot,http://www.proteeted herbs.org.uk. [4]CerkauskasRFandUyenakaJ.,1990 FirstReportofSeptoriaBlightofParsleyinOn ario,PlantD)is 74:1037. DavisRM andRaidR.N.,2002.CompendiumofUmbelliferouscropdiseases,APs [[5 Press,P24. [6]DesmazieresJBHJ.,1842.NoticesurseizeespecesdugenreSeptoria,recemment decouvertesenFrance,etlaplupartinedites MemoiresdelaSocieteRoyaledesSciences,de lAgricultureetdesArtsdeIille1842:94-103. & EIlisMB. [7刀 EIlisJ P.,1987 MierofungionlandPlants:AnldentifieationHandbook TheRichmondPublishingCoLtd. [8]FarrDF.,BillsGF.,ChamurisGP& RossmanA Y.,1989 Fun onplantsand Te nPhytopathologiealsociety.sL Pal. plantproductsintheUnitedstates APsPress TheAmeriean Minnesota USA. F97 GamlielA,andYardenO.,1998.DiversificationofdiseasesaffegC HerbCro ropsinlsrael cting AccompaniestheincreaseinHerbCropProduction. 26(1):53-58. Phytoparasi ssitica rHHoler Ha ,2002.O [10 S oeuremetandbiologyfse septoriapetroselinionparsley,Rheinis- agner stitutfurPIlanzenkrankheiten,Inaugural-Dissertation. dhenFriedrieh-wIhelms-Unmiversitat [11]HochmuthG. andMaynardD.N.,1999. ParsleyProduetioninFlorida:ln:G. .),VegetableProduetionGuideinFlorida,SP170,UniversityofFlorida,Gainesville Hochmuthed.), p189-192. [12] Kurts andTokF M.,2006.lnluenceofinoculumconcentration,leafage,temperature anddurationofleafwetnessonSeptoriablightofparsley.CropProtection,25(6):556-561. 13 KurtS.,2003FirstreportofSeptoriablightofparsleycausedbySeptoriapetroseliniin theMediterraneanregionofTurkeyPlantDis ,87:99. LacyM.L ,BergerRD.,GirbertsonR.LandLittleEL ,1996Currentchallenges 14 incontrollingdiseasesofceleryPlantDis ,80:1084-1091. [15]SmithI.M.,DunezJ.,LelliottR.A.,PhillipsD.H andArcherS.A.,1988European handbookofplantdiseases,BlackwelSeientificPublications. [16 Mohammads E.,1990.IdentifieationstudyofparsleylatebightinNenevah province ,22:313-319. IraqMes Aeriec" :sopotamia,J.
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欧芹壳针孢检疫鉴定方法GB/T28979-2012

欧芹壳是一种重要的香料和药材,但因为其生长环境比较特殊,容易受到各种病害的侵袭,其中针孢病就是其中之一。为了确保欧芹壳的进出口贸易和种植业的健康发展,我国制定了GB/T28979-2012标准,规定了欧芹壳针孢的检疫鉴定方法。

1. 样品采集

在进行欧芹壳针孢的检测前,需要对样品进行采集和处理。样品的采集应该遵循一定的规范,以确保采集到的样品具有代表性,并且样品的数量也需要满足一定的要求。

2. 菌种鉴定

在样品采集后,需要进行针孢菌的鉴定。该标准主要包括了常规的菌种鉴定方法,如形态学观察、生理生化试验等。同时该标准还规定了PCR方法、ELISA方法等现代生物技术方法的应用。

3. 病原学检测

病原学检测是欧芹壳针孢检疫鉴定的核心部分。病原学检测主要包括对病原菌的检测和鉴定。该标准规定了不同样品类型下的病原学检测方法,并且对于各类样品的处理方法也进行了详细说明。

4. 结果判断

在进行完上述步骤后,需要根据检测结果来进行判断。该标准规定了判断标准和方法,以确保判断结果的可靠性。

总之,GB/T28979-2012标准提供了一套科学的、规范的欧芹壳针孢检疫鉴定方法。在欧芹壳进出口贸易和种植业中,严格按照该标准进行检测和鉴定,能够有效预防和控制针孢病的发生和传播,保障了欧芹壳产业的健康发展。

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和欧芹壳针孢检疫鉴定方法类似的标准

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