GB/T35900.2-2018
动物流感检测第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法
Animalinfluenzadetection—Part2:Methodofreal-timeRT-PCRforthedetectionofH3subtypeinfluenzavirus
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- 中国标准分类号(CCS)B41
- 国际标准分类号(ICS)11.220
- 实施日期2018-09-01
- 文件格式PDF
- 文本页数11页
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动物流感检测第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法
国家标准 GB/35900.2一2018 动物流感检测第2部分:H3亚型流感 病毒核酸荧光RT-PCR检测方法 Animalinfuenzadetection一Part2:Methodofreal-timeRI-PCRfor thedeteetionofH3 inflenzvirus 3subhype 2018-02-06发布 2018-09-01实施 国家质量监督检验检疫总局 发布 国家标准化管理委员会国家标准
GB;/T35900.2一2018 前 言 GB/T35900《动物流感检测》目前分为3个部分: -第1部分:Hl亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法; -第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法; 第3部分:H和H3亚型流感病毒核酸双重荧光RT-PCR检测方法
本部分为GB/T35900的第2部分
本部分按照GB/T1.l一2009给出的规则起草
本部分由农业部提出
本部分由全国动物卫生标准化技术委员会(SAC/TC181)归口
本部分起草单位.中华人民共相国北京出人境检验检疫局 本部分主要起草人:刘环、乔彩霞、蒲静、张伟、高志强、谷强、张鹤晓、张利峰、韩晶
GB/T35900.2一2018 引 言 本文件的发布机构提请注意,声明符合本文件时,可能涉及到本文件4.1.8与“检测Hl和H3亚型 流感病毒的核苷酸序列和试剂盒”相关的专利的使用
本文件的发布机构对于该专利的真实性、有效性和范围无任何立场
该专利持有人已向本文件的发布机构保证,他愿意向任何申请人在合理且无歧视的条款和条件下, 就专利授权许可进行谈判
该专利持有人的声明已在本文件的发布机构备案
相关信息可以通过以下 联系方式获得 专利持有人:北京出人境检验检疫局
地址:北京市朝阳区甜水园街6号
请注意除上述专利外,本文件的某些内容仍可能涉及专利
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GB;/T35900.2一2018 动物流感检测第2部分H3亚型流感 病毒核酸荧光RT-PCR检测方法 范围 GB/T35900的本部分规定了H3亚型流感病毒核酸的荧光RT-PCR操作方法
本部分适用于禽、猪和马及其产品中H3亚型流感病毒核酸的检测
规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的
凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文 件
凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法 GB/T19438.1一2004禽流感病毒通用荧光RT-PCR检测方法 GB19489实验室生物安全通用要求 缩略语 下列缩略语适用于本文件
荧光RT-PCR实时荧光反转录聚合酶链反应(real-imereversetranseriptpolymerasechainre- action C(或Cp)值每个反应管内的荧光信号量达到设定的值所经历的循环数(eyelethreshold,or crossingpoint 互补RNA(complementNA) cRNA DEPC 焦碳酸二乙惭(diethylpyrocarbonate FAM 梭基荧光素(carboxyluorescein) MGB 小沟结合物(mimorgroebinder 磷酸盐缓冲液(phosphatebuffersaline' PBS RNA 核糖核酸(ribonucleicacidD 试剂和材料 4.1试剂 总则除非另有说明,所用试剂均为分析纯,所用液体试剂均需使用无RNA酶的容器进行分装
4.1.1 41.2TRIzol;2C25C保存
4.1.3氯仿:2C8C预冷
4.1.4异丙醇;-20预冷
4.1.5DEPC水:见附录A中A.1
4.1.675%乙醉;用新开启的无水乙醇和DEPC水配制,一20C预冷
GB/T35900.2一2018 4.1.7PBS(含牛血清白蛋白、青霉素和链霉素);配方见A.2
4.1.8引物和探针序列及反应液配方:见附录B
4.1.9阳性对照为灭活的H3亚型动物流感病毒或体外转录的H3亚型流感病毒HA基因cRNA溶 液;阴性对照为已知流感病毒阴性的禽、猪或马组织悬液
4.2仪器设备及耗材 4.2.1荧光PCR检测仪及配套反应管(板) 4.2.2高速台式冷冻离心机(最高离心速度不低于120001 r/min
4.2.3台式离心机
4.2.4振荡器 4.2.5组织匀浆器
4.2.6冰箱(2C8C和-20C两种)
4.2.7微量移液器(54L、10AL、100AL、l000AL)及配套吸头(无核酸酶)
4.2.81.5ml离心管(无核酸酶)和5mmL采样管
5 实验室的标准化设置与生物安全管理 本方法的实验室设置与管理见GB/T19438.12004附录C;实验室生物安全管理见GB19489. 样品的采集与前处理 6 6.1总则 采样过程中样本不得交叉污染,采样及样品前处理过程中应戴一次性手套
6.2采样及处理工具 6.2.1采样专用商品化棉拭子,剪刀、银子,研钵、5ml采样管、一次性采样袋
6.2.2除棉拭子和采样袋外.上述取样工具应经121C士2C.15nmin高压灭菌并烘干或经160C干烤 2h
6.3样品采集 6.3.1拭子样品 活动物采集拭子样品
根据动物种类可采集咽喉拭子、泄殖腔拭子(禽类)或鼻拭子(猪、马等其他 动物)
采集方法如下: -取咽喉拭子时将拭子深人喉头及上飘裂来回刮2次一3次并旋转,取分泌液 -取泄殖腔拭子时将拭子深人泄殖腔旋转一圈并沾取少量粪便; -取鼻拭子时将拭子深人鼻腔来回刮2次3次并旋转,取分泌物
将采样后的拭子放人盛有2.0ml
PBS(含牛血清白蛋白,青霉素和链霉素)的采样管中,编号
6.3.2组织样品 病死动物采集肺脏或气管等组织
用无菌剪、慑采集待检组织,装人一次性采样袋或其他灭菌容 器,编号
GB;/T35900.2一2018 6.4样品贮运 样品采集后置保温箱中,加人预冷的冰袋,密封,24h内送实验室
6.5样品处理 6.5.1拭子样品 样品在振荡器上充分混合后,将拭子中的液体挤出,3000r/min离心5min,吸取上清液1.0m转 人无菌的1.5mL离心管中,编号备用
6.5.2组织样品 用无菌的剪刀和锻子剪取待检样品2.0g于研钵或组织匀浆器中充分研磨,再加l0.0ml
PBs(含 牛血清白蛋白、青霉素和链霉素)混匀,3000r/ /min m 离心5min后,取1.0ml.上清液转人无菌1.5 灭菌离心管中,编号备用
6.6样品存放 采集或处理好的样品在2C8C条件下保存应不超过24h;若需长期保存,应放置一70C冰箱 但应避免反复冻融(冻融不超过3次)
操作方法 7.1样品核酸提取 7.1.1在样本制备区进行,采取TRRIzol裂解法提取;也可采用其他等效的RNA提取方法
7.1.2待检样品、阳性对照和阴性对照的份数总和用表示,取n个灭菌1.5mL离心管,逐管编号
7.1.3每管加人600LTRlol. 7.1.4每管对应编号分别加人200L待检样品、阳性对照或阴性对照混匀 715 每管加人200L.氧仿,充分颠倒混匀
于4、12000r/min离心15 min
7.18新取"个灭菌的1.5mL离心管,逐管编号.每管加人500L异丙醇(一20C预冷) 7.17吸取本标准7.1.5各管中的上清液500A.转移至7.1.5相应的管中,避免吸出中间层,艇倒 混匀
7.1.8于4、12000r/min离心15 ,轻轻倒去上清,倒置于吸水纸上,沥干液体,不同样品应在吸 min, 水纸不同地方沥干
7.1.9每管加人600L75%乙醇(一20C预冷),颠倒洗涤
7.1.10于4C、12000r/min离心l0min,轻轻倒去上清,倒置于吸水纸上,沥干液体,不同样品应在 吸水纸不同地方沥干
7.1.114000r/ /min离心10s,将管壁上的残余液体甩到管底部,用微量移液器尽量将其吸干
注意一 份样本换用一个吸头,吸头不要碰到有沉淀一面
7.1.12室温干燥3min
不宜过于干燥,以免RNA不溶
7.1.13每管加人1lALDEPC水,轻轻混匀,溶解管壁上的RNA,2000r/min离心5s,获得RNA溶 液,冰浴保存备用(4C保存不超过8h,若需长期保存应放置一70C冰箱)
7.2扩增试剂的准备与配制 7.2.1在反应混合物配制区进行
GB/T35900.2一2018 7.2.2每个检测反应体系需使用15AL荧光RT-PCR反应液
根据7.1.2中设定的"值,按表B.2配 制反应液,充分混匀后分装,每个反应管15AL
转移反应管至样本制备区 7.3加样 7.3.1在样本制备区进行
7.3.2在上述7.2.2的反应管中分别加人7.1.13中制备的RNA溶液10AL,使每管总体积达到25AL 记录反应管对应的样品编号
盖紧管盖后,瞬时离心 7.4荧光RT-CR反应 7.4.1在检测区进行
7.4.2将7.3.2加样后的反应管放人荧光PCR检测仪内,记录反应管摆放顺序
选定FAM作为报告 基团,MGB作为淬灭基团,反应参数设置如下 第一阶段,反转录42C/30 mIn; 第二阶段,预变性94C/3min; 第三阶段,94c/15s,50c/10s,60c/35s,40个循环,在第三阶段每次循环的60C退火延 试验结束后,根据收集的荧光曲线和c(或Cp)值判定结果
伸时收集荧光
8 结果判定 结果分析条件设定 8.1 闯值设定原则;根据仪器噪声情况进行调整,以值线刚好超过阴性对照品扩增曲线的最高点 为准
8.2实验成立的条件 8.2.1阴性对照无C(或C)值并且无扩增曲线
8.2.2阳性对照的C'(或Cp)值应<30,并出现典型扩增曲线(参见附录C)
8.2.3如阴性和阳性对照不满足以上条件,此次试验视为无效
8.3结果描述及判定 8.3.1阴性 无C'或Cp)值并且无扩增曲线,表示样品中无H3亚型流感病毒核酸
8.3.2阳性 C(或Cp)值<30,且出现典型的扩增曲线,表示样品中存在H3亚型流感病毒核酸
8.3.3有效原则 C(或Cp)值>30,且出现典型的扩增曲线的样品建议复检
复检仍出现上述结果的,判为阳性, 否则判为阴性
GB;/T35900.2一2018 附 录 A 规范性附录 溶液配制 DEPC水配方 A.1 将DEPC加人去离子水(符合GB/T6682要求)中至终浓度为0.1%体积比),充分混合均匀后作 用12h,分装,121C士2C高压灭菌30min,冷却后冷藏备用
A.2磷酸盐缓冲液(PBs)配方(含牛血清白蛋白、青霉素和链霉素) A.2.1A液 0.2mol几磷酸二氢钠水游液;NaHHPO.H.o27.
g,溶于蒸憎水中,最后定容至1000 ml
A.2.2B液 0.2mol/儿L
磷酸氢二钠水溶液;Na,HPO
7H,O53.6g或Na,HPO12H.,O71.6g或 Na.HPO2H.035.6g),加蒸馏水溶解,最后定容至1000mL A.2.30.01mol/L、pH7.2磷酸盐缓冲液(PBs)(含牛血清白蛋自、青霉素和链霉素)的配制 取A液14ml,B液36mL,加NaC8.5g,牛血清白蛋白5g,用蒸僧水定容至1000ml
经过滤 除菌后,无菌条件下分别按10000U/mL加人青霉索和链霉素
GB/T35900.2一2018 录 附 B 规范性附录) 引物探针序列及荧光RT-PCR反应液配方 引物探针序列 B.1 H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法所用的引物探针序列见表B1
表B.1引物探针序列 检测靶基因 引物或探针名称 序列(5'-3' 基因组位置 上游引物 TGGATTTCMTTYGCCATATCAT 1597nt1618nt 下游引物 (GCAAATGTrGCAYcTRATRTTG H3亚型流感病毒HA基因 1674ntl695nt FAM-TGGCARGcCcAcCAT-MGB 探针 1654nt一1667nt 注1上游和下游引物均为简并引物,探针为MGB修饰的短探针 注2:引物和探针可由生物公司合成,纯度为HPLC级,用DEPC水溶解并稀释至终浓度10Amol/L,,-20C保 存备用
注3:引物探针是根据已发布的毒株序列进行设计,基因组位置参考毒株A/Swine/Minnesota/593/99H3N2) HA序列(GenBank登录号:AF251427.2)
B.2荧光RT-CR反应液配方 H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR反应液配方见表B.2
表B.2荧光RT-PCR反应液配方 组 分 1个检测体系的加人量 5×RT缓冲液 5,0AL MgCl.(25mmol/L) 1.0L dNTP(2.5mmol/1) 2.04L 4mol/1 上游引物(1o l1.0 下游引物0molL l.04l. 探针(10Amol/L 0.5AL M-MLV反转录酶(200U/L 0.5L 0.25 RNA酶抑制剂(40U/Al l AL Ta酶'(5U/L 0.25AL DEPC水 3,5L 5×RT缓冲液的组成为:375mmol/IKCI、15mmol/IMgCl、50mmol/IDTT、250mmol/LTris-HClpH 8.3,25C) Taq酶;具有5'--3'外切活性
GB;/T35900.2一2018 B.3注意事项 在检测过程中,应严防不同样品间的交叉污染
反应液分装时应避免产生气泡,上机前检查各反应管是否盖紧,以免荧光物质泄露污染仪器
GB/T35900.2一2018 附 录 C 资料性附录) 典型扩增曲线示意图 H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法阳性和阴性典型扩增曲线见图C.1
18.986- 17.486 15.986- 阳性 14.486 12.986 11.486 9.986 8.486 6.986 5.486 3.986 2.486- 0.986 -阴性 20 25 30 35 扩增循环数 图C,1H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR典型扩增曲线示意图
动物流感检测第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法GB/T35900.2-2018
动物流感是一种严重的传染病,可以对动物健康和人类健康造成威胁。因此,针对动物流感的检测方法十分重要。H3亚型流感病毒是近年来逐渐普及的一种病原体,在动物流感检测中也备受关注。GB/T35900.2-2018标准中介绍了一种针对H3亚型流感病毒的核酸荧光RT-PCR检测方法。
什么是核酸荧光RT-PCR检测方法?
核酸荧光RT-PCR是一种高灵敏度、高特异性的核酸分子检测技术。其中,RT是反转录(Reverse Transcription)的缩写,PCR是聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction)的缩写。这种技术可以将RNA转录成为cDNA,并且进行扩增,同时利用荧光探针来检测样本中是否存在目标序列。
核酸荧光RT-PCR检测方法在动物流感检测中的应用
GB/T35900.2-2018标准中介绍了一种针对H3亚型流感病毒的核酸荧光RT-PCR检测方法。该方法利用引物和探针的特异性结合,可以快速、准确地检测出样本中是否存在H3亚型流感病毒,具有非常高的敏感性和特异性。
不仅如此,该方法还可以通过优化反应体系,提高检测灵敏度和稳定性,同时也可以应用于多重病原体检测。因此,该方法已成为目前动物流感检测领域的主流技术之一。
结论
动物流感的防控尤为重要,其中检测方法的选择是关键因素之一。H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法具有快速、准确、高敏感性、高特异性和多重病原体检测等优点,已成为目前动物流感检测领域的主流技术之一。随着科技的不断进步,相信这一检测技术也会不断完善,为动物流感的防控提供更加有力的保障。
动物流感检测第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法的相关资料
- 动物流感检测A型流感病毒通用荧光RT-PCR检测方法GB/T27539-2011
- 动物流感检测A型H1N1流感病毒中HA、NA的焦磷酸测序检测方法GB/T27538-2011
- 动物流感检测A型流感病毒分型基因芯片检测操作规程GB/T27537-2011
- 动物流感检测第3部分:H1和H3亚型流感病毒核酸双重荧光RT-PCR检测方法GB/T35900.3-2018
- 动物流感检测第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法GB/T35900.2-2018
- 动物流感检测第3部分:H1和H3亚型流感病毒核酸双重荧光RT-PCR检测方法GB/T35900.3-2018
- 动物流感检测第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法GB/T35900.2-2018
- 动物流感检测第2部分:H3亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法GB/T35900.2-2018
- 动物流感检测第1部分:H1亚型流感病毒核酸荧光RT-PCR检测方法GB/T35900.1-2018